UNIVERSIDAD NACIONAL PEDRO RUÍZ GALLO
ESCUELA
DE BIOLOGÍA
Departamento Académico de Biología
Guía de Prácticas de Fitopatología
M. ISABEL OLIVOS
Lambayeque - Perú
2022 - II
Caratula:
Figura 1. “Fumagina” sobre hojas de Citrus aurantifolia – Distr. J. Leonardo O., Chiclayo. 2021.
Figura 2. Virosis en Carica papaya “papaya” in Mercado Moshoqueque, Chiclayo. 2021.
“Diagnóstico de enfermedades de plantas es un arte. Progreso es el resultado de práctica. Es similar al progreso obtenido jugando golf o tocando violín, asumiendo que uno tiene aptitud para ello. Se requiere mucho tiempo desarrollar destreza. No hay sustituto para la experiencia”. Rubert B. Streets, Sr. 1972.
Tabla 1: Especies bacterianas y las enfermedades que producen sobre los cultivos
Tabla 2: Especies fungosas y las enfermedades que producen sobre los cultivos
Tabla 3: Especies Peronosporaceae y las enfermedades que producen sobre los cultivos
Tabla 4: Especies Moniliaceae y las enfermedades que producen sobre los cultivos
Tabla 5: Especies Demateaceae y las enfermedades que producen sobre los cultivos agrícolas
Tabla 6: Especies Demateaceae y enfermedades que producen sobre los cultivos agrícolas
Tabla 7: Especies de Melanconiaceae y las enfermedades que producen sobre los cultivos agrícolas
Tabla 8: Especies de Mycelia Sterilia y enfermedades que producen en los cultivos agrícolas
Tabla 9: Especies de hongos Eurotiales y sus hospedantes
Fig 1: Peritecios oscuros de Ophiobolus graminis Sacc. (Gaeumannomyces graminis Arx & D. L. Oliver) en las vainas foliares de arroz.
Fig 2: Basidiosporas de un Agaricus bisporus (champiñón) Tomado de la Web.
Fig 3: Ciclo de la roya de los cereales. Cortesía R. Mont.
Fig 4: Ciclo biológico de Tilletia caries, B, C, E, G, I, tomado con permiso de los autores, de Bunt or stinking smut of wheat (planografiado), 1941, Holton y Heald, Burguess Publishing Co.,
Fig 5: Carbón del maíz amarillo en campo - Tucume-2002.
Fig 6: Ciclo de vida del Ustilago maydis. Tomado de Fincham &c Day.
Fig 7: Agaricus bisporus (champiñones). Empresa Pacus. Lima, Perú. Fototeca María I. Olivos.
Fig 8: Bejin (Coprinus sp. Basidiomicete). Fototeca. M. I. O.
Fig 9: Sombrerito (Lepiota sp. Basidiomicete)
Fig 10 y 11: Setas ostra: Basidiomycetes (Figuras A y B)
UNIVERSIDAD NACIONAL PEDRO RUIZ GALLO
Facultad de Ciencias Biológicas
Departamento Académico de Biología
Prácticas de Fitopatología
Códigos: BI 51019 - 04 A, BI 515 04 A
Pre requisito: Microbiología General
Las prácticas de Fitopatología tienen dos ambientes el de laboratorio y campo, tienen el propósito de complementar los conceptos vertidos en las clases teóricas con observaciones objetivas. Es necesario que se tenga en cuenta que la enseñanza llevada a cabo en el laboratorio es un medio de aprendizaje de los estudiantes de Agronomía, Biología, Botánica y Microbiología.
Justificación
1. Las prácticas de Fitopatología darán al estudiante la habilidad y confianza, así como también las herramientas para la interpretación de las enfermedades de plantas, para poder competir en el ejercicio profesional con eficiencia.
2. Los conocimientos y habilidades adquiridas permitirán al estudiante emprender proyectos de tesis de la especialidad en la Escuela de ciencias agronómicas y biológicas.
1. Observar y describir con criterio técnico, los síntomas y los signos de las enfermedades de las plantas alimenticias.
2. Identificar, a través de técnicas de laboratorio, los reactivos y el microscopio compuesto binocular los principales patógenos de plantas.
3. Conocer el ciclo de los patógenos y de las enfermedades de las plantas de importancia local, regional y nacional.
4. Capacitar al estudiante de las ciencias biológicas, con énfasis en sus áreas de Biología, Botánica y Microbiología le servirán para realizar una diagnosis etiológica elemental usando los métodos y técnicas de laboratorio en Fitopatología.
1. Las prácticas se desarrollarán revisando las instrucciones de la Guía respectiva, las que deberán leerse con antelación, la idea es que el estudiante pueda informarse del tema a tratar durante una clase presencial y virtual.
a. Pasos parciales: Se tomarán 2 pasos parciales (ver calendario) de 30 min de duración.
b. Examen final de Prácticas: En este examen se tratará de verificar si el estudiante ha cumplido con los objetivos planteados en la asignatura, por lo que versará en torno a cuatro objetivos planteados.
Este examen consta de dos partes: Práctico y escrito.
Parte práctica: El estudiante identificará, con ayuda del microscopio compuesto binocular por lo menos dos patógenos, de modo análogo en el material herborizado y procedente del campo, reconocerá síntomas y signos; la parte práctica tendrá un valor de 50% del examen final.
Parte escrita: constará de preguntas de opción múltiple y problemas de conocimiento y criterio en solución de problemas de sanidad vegetal, esta parte tendrá un valor del 50% del examen final.
Productos acreditables (PA) y monografías: Se darán trabajos de esta naturaleza, con el propósito de complementar algunos conceptos, e investigar. Además, para que el estudiante conozca la bibliografía de la asignatura y use las normas APA. Estos trabajos serán materia de preguntas en los pasos parciales y examen parcial y final de prácticas.
d. Ilustraciones: En las sesiones de prácticas los estudiantes harán ilustraciones de diversos microorganismos, síntomas, signos, ciclos de vida de patógenos y enfermedades. Los estudiantes deberán presentar y hacer firmar las hojas de dibujos por cada práctica y para evaluar al final de la asignatura de Fitopatología.
e. Herbario: Se confeccionará un herbario original con 10 síntomas y/o signos diferentes de enfermedades de plantas alimenticias, acorde con las instrucciones dadas por su docente en la Guía de Prácticas; al pie de cada espécimen herborizado deberán ir los datos de síntomas y signos siguientes:
Tipo de síntoma/signo
Nombre del síntoma/probable agente patógeno
Lugares de recolección
Colector (s)
Es necesario tener en cuenta, que a criterio de la docente no se aceptara aquellos herbarios que tengan ejemplares muy viejos o con características de haber sido utilizados por otros estudiantes de los ciclos anteriores.
3. Formas de calificación: Cada tipo de evaluación para el promedio final de prácticas, tendrá el coeficiente de ponderación siguiente:
Un paso parcial: 1 Temas encargados:2
Examen final de prácticas: 2
El promedio final de prácticas, tendrá un 10% de valor en el promedio final de la asignatura de Fitopatología.
4. Metodología y técnicas de enseñanza. En la sesión de prácticas se empleará 15 a 20 minutos para las instrucciones generales más las respuestas de algunas preguntas, para luego laborar las prácticas programadas del ciclo académico.
IV. MATERIAL DIDÁCTICO
De acuerdo a la naturaleza de la práctica se podrá emplear los siguientes materiales y equipos: muestras biológicas frescas, PPT, videos, imágenes o láminas con síntomas, signos y enfermedades observadas en condiciones de campo y en el buscador de Google, diapositivas, lupas, cámaras húmedas, placas Petri, agar PDA, agar Sabouraud, órganos vegetales frescos y afectados, microscopio compuesto monocular, microscopio compuesto binocular y estereoscopio.
V. MATERIAL NECESARIO
Los estudiantes deberán tener para aula virtual y prácticas en el laboratorio de Biología los materiales necesarios siguientes:
Guía de Prácticas de Fitopatología
Carpeta con hojas A4 con documento Word en folder de manila para los informes de práctica tamaño oficio.
Papel bond A4 de 75 g
Textos o escritos con normas APA y si es con ordenador con letra Times New Roman tamaño 12
Porta y cubre objetos en número de seis unidades de cada uno
Estuche de disección con un mínimo de una tijera y dos ajugas de disección.
Una hoja de afeitar o bisturí
Órganos vegetales diversos con síntomas o signos de enfermedad en condiciones aceptables (No demasiado poco ni mucho).
Placas de Petri 6u
Tubos de ensayo 12 u
Papel toalla 2 u
Tápers plásticos transparentes de formas y tamaños diferentes (2 u)
Una fuente mediana de polietileno
Lápiz de carbón número 2 o un programa en ordenador de dibujo Lápices de colores y borrador
Plumones de tinta negra indeleble
Papel bond de 75 g; 100 u
Papel periódico de reciclaje (500 u) para herborizar Tijeras de sastre y tijeras de podar
Agua destilada 4000 ml
Alcohol de 90° 600 ml
Mechero de alcohol con mecha de hilo de algodón (pábilo)
Fósforos una cajita
Estilete o ansa bacteriológica/micológica Cinta scoch
Cámara fotográfica Algodón un paquete
PROGRAMA DE PRÁCTICAS DE FITOPATOLOGIA
1. Instrucciones Generales de prácticas: Descripción y Uso del microscopio compuesto, selección, colección, conservación y envío de muestras afectadas o enfermas con fines del diagnóstico fitopatológico y confección de un Herbario fitopatológico original.
2. 2. Síntomas y signos
3. 3. Síntomas y signos del probable agente etiológico
4. 4. Clasificación de las enfermedades. Enfermedades abióticas. Diapositivas/ppt/videos
5. Enfermedades bióticas: virales, fitoplásmicas, bacterianas, fúngicas. Presentación de diapositivas/video de enfermedades virales, bacterianas, fúngicas e informes de prácticas.
6. Chitridiomycetes, Plasmodiophoromycetes y Zygomycetes.
7. 7. Continuación de práctica 6. Presentación de diapositivas/ppt/video
8. 8. Enfermedades causadas por Chromistas u Oomycetes (Pythium spp., Phytopthora spp.)
9. 9. Enfermedades causadas por Ascomycetes (Erysiphe polygoni, Glomerella spp. Piricularia, Geaumannomyces). Presentación en láminas, diapositivas/ppt, video e informes de
0. 10. Basidiomycetes: Carbones y royas en cereales y otros cultivos.
Segundo Paso
11. Deuteromycetos. Enfermedades de almacigo, radiculares, vasculares y manchas foliares.
12 12. Continuación de práctica 11. Presentación de láminas, diapositivas/ppt/pdf/word/videos
13 13. Enfermedades causadas por nematodos y plantas superiores.
14 14. Diagnosis. Identificación de patógenos, técnicas de laboratorio y Postulados de Koch.
15. Enfermedades causadas por algas y plantas parásitas. Problemas más frecuentes.
16. EXAMEN FINAL DE PRACTICAS
USO Y LIMPIEZA DEL MICROSCOPIO COMPUESTO
Al hacer uso de un microscopio compuesto, se debe efectuar secuencialmente las siguientes operaciones:
1. 1. Quitar la cubierta que protege al microscopio compuesto
2. 2. Limpie con un lienzo suave o papel de lente, los sistemas ópticos: ocular, objetivos, (espejo), condensador, luminaria.
3. Colocar la columna (brazo, asa) y el tubo óptico en una posición adecuada de tal forma que permita trabajar al estudiante cómodamente.
4. Observar por el ocular y oriente la lámina con el condensador de tal forma que la luz se refleje a “la muestra” y la abertura del diafragma hasta observar en el fondo del tubo un círculo blanco uniforme.
5. 5. Colocar y sujetar la preparación sobre la platina del microscopio compuesto.
6. 6. Enfocar la preparación, usar siempre el objetivo de menor aumento (4X, 10X, 40X).
7. 7. Usando el micrométrico haga descender el tubo óptico hasta lograr la imagen de la muestra.
8. 8. Dar nitidez a la imagen usando el tornillo micrométrico.
9. 9. Si desea observar a más aumento cambie el objetivo de menor aumento, haciendo girar el revolver hasta el aumento requerido, después proceda como en 7 y 8
10. Para observar con el objetivo de inmersión (100X) tener la precaución de bajar el tubo óptico muy lentamente, lograda la imagen proceda como en 8.
11. Terminada la observación ubique y retorne el objetivo de menor aumento a su posición inicial.
12. Limpiar el lente del objetivo de inmersión inmediatamente después de su uso, para ello quite el aceite con un el papel de lente, luego limpie con un segundo papel de lente impregnado en xilol, finalmente secar con otra hoja de papel de filtro.
13 13. Retirar la preparación microscópica usada y limpiar.
14 14. Terminado el trabajo, colocar el microscopio compuesto en su posición derecha.
15 15. Colocar la cubierta al microscopio compuesto. Evitar el polvo.
16 Advertencia:
d Dejar material de vidrio, los equipos de óptica y la mesa de trabajo del laboratorio en completo orden y limpieza.
Nota: El xileno, xilol o dimetilbenceno, C6H4(CH3)2 es el que se obtiene a partir del Benceno.
Informe de Práctica 1 por presentar el estudiante: Descripción, clasificación y fundamento físico del Microscopio compuesto binocular y sus aplicaciones en las Ciencias biológicas.
Docente: M. Isabel Olivos F., Fitopatóloga.
COMO COLECTAR, PREPARAR, Y ENVIAR MATERIAL VEGETAL PARA LA IDENTIFICACIÓN DE ENFERMEDADES DE VEGETALES
Los especímenes u órganos de plantas enfermas remitidas al Lab. de diagnóstico fitopatológico, podrían llegar, en pésimas condiciones porque el empaque es dificultoso y los especímenes son siempre desventajosos (en los órganos suculentos).
Los especímenes demasiado secos o en estado avanzado de pudrición y aquellos que llegan sin la información necesaria deben ser descartados, eso representa lógicamente tiempo y labor malgastados por el remitente y muchas dificultades para el personal del departamento de diagnóstico en Agronomía/Biología.
La Guía de Prácticas de Fitopatología dará los pasos para los estudiantes, agricultores o técnicos agrarios, que por una y otra razón deseen usar los servicios del laboratoriode Fitopatología a fin de hacer más fácil la labor de diagnosis por parte del personal encargado y de esta manera reciban un buen servicio (Ames y Mattos, 1983).
Para que una muestra de planta afectada sea útil en la diagnosis de una enfermedad es necesario considerar lo siguiente:
1. Elección en buenas condiciones de la muestra
2. Los especímenes o muestras deben llegar en buenas condiciones
3. Este acompañada de los datos adecuados y actualizados
Una buena elección de la muestra o material enfermo facilitará enormemente la labor de diagnosis clínica vegetal, para esto se debe tener en cuenta:
a. Cantidad: poca cantidad de material bien seleccionado es mejor que una gran cantidad tomada al azar.
b. Claridad: los síntomas deben ser tan claros como sea posible encontrar.
c. Fases de la enfermedad: colectar varias fases de la enfermedad es de gran ayuda y permitirá observar el desarrollo de la enfermedad; es deseable incluir material sano para compararlo con el material enfermo.
1. 1, Plantas que muestran marchitamiento, amarillamiento o decaimiento general:
a. Enviar las plantas completas mostrando síntomas iniciales incluyendo raíces o partes de ellas.
b. Desenterrar cuidadosamente la planta completa, sin trozarla
c. Enviar muestra del suelo de la rizósfera en la bolsa sellada a fin de evitar el resecamiento.
2. Chancros:
a. Seleccionar plantas de infección reciente.
b. Enviar entera la porción cancrosa, con algo de madera sana sobre y por debajo del cancro. Ramas y ramitas que han estado muertas por algunos meses, son inútiles para la identificación del patógeno y diagnosis.
a. Colectar hojas mostrando estadios tempranos y tardíos de infección.
b. Es generalmente imposible diagnosticar hojas que muestren quemaduras marginales porque éstas se deben a condiciones abióticas, enfermedades radiculares o daños por productos agroquímicos.
c. Remitir las diversas hojas enfermas ubicándolas entre papel periódico u otro material absorbente como papel secante.
a. Las podredumbres de frutos frescos delicados y verduras (papa, mangos, fresas, árandanos, cebollas y tomate) son de una atención especial. Evitar enviar en estado avanzado de descomposición.
b. Escoja especímenes frescos mostrando síntomas iniciales.
c. Envolver individualmente en hojas de papel y acondicionar inmediatamente en caja de cartón resistente entre aserrín/periódicos bien secos. No se debe agregar humedad extra, procurar guardarlos en frio hasta su envío.
d. Tener en cuenta que el almacenamiento de material suculento en desorden trae consigo pudrición que hacen difícil e imposible su diagnosis.
Una muestra fitopatológica para que llegue en buenas condiciones y la remisión de esta a cualquier centro de estudios o diagnosis debe ser lo más rápido posible y en un envase más o menos hermético y si es posible en refrigeración a fin de evitar que los ejemplares lleguen secos o en estado de descomposición.
1. Envuelva el paquete en papel fuerte. Tenga cuidado de no apiñar o apretar las muestras de plantas.
2. Embalar en una caja de cartón o de plástico fuerte para prevenir el aplastado o machacado de las plantas durante el transporte.
3. Identificar los envíos con etiquetas externas e internas; no ponga la etiqueta interna en contacto con la humedad.
4. Despachar los envíos o paquetes de modo que lleguen en días laborables y el tiempo más corto.
5. Marque los paquetes a nombre del Laboratorio de Biología o Fitopatología, Área de diagnosis. Universidad Nacional Pedro Ruíz Gallo/UNALM. Otros.
6. Laboratorio de diagnosis efectuará los exámenes de las muestras para determinar el agente causal sea este un virus, hongo, bacteria, protozoo o un nematodo.
7. El Laboratorio de Biología/Fitopatología no diagnostica daños causados por artrópodos, problemas de suelos y por excesos o carencias nutricionales.
INFORMACIÓN QUE DEBEN ACOMPAÑAR A LAS MUESTRAS PARA EL DIAGNÓSTICO FITOPATOLÓGICO
Las muestras a transportar por trasporte aéreo o terrestre deben acompañarse de datos e información adecuada. De esa manera se facilita la diagnosis ya que la sintomatología se podrá relacionar con los mismos.
Se deberán acompañar entre otros los siguientes datos:
1. Lugar de procedencia
2. Fecha de colección
3. Hospedante (nombre común, nombre técnico, variedad, cultivar, clon, otros)
4. Sintomatología observada
5. Condiciones del clima del lugar: temperatura, humedad relativa
6. Otros datos: aplicaciones de fungicidas, herbicidas, insecticidas, abonos orgánicos, secuencia de los cultivos y otros.
7. Importante: Tratar de efectuar una apreciación de la intensidad (% de incidencia) del ataque, referida al porcentaje y la magnitud de su presencia o distribución en el área dada a conocer de la diseminación,
Referencias
Ames, T. y L. Mattos (1983). Fitopatología. Departamento de Fitopatología. Programa de Graduados, UNALM, Perú, 41 pp.
Castaño, J. (1986). Prácticas de Laboratorio de Fitopatología. Edit. El Zamorano, Escuela agrícola panamericana. Colombia 45 pp.
Fernández, C. y R. Juncosa. (2002). Biopesticidas: ¿La agricultura del futuro?
Phytoma141; 14-19.
French, E. y T. Hebbert. (1982). Métodos de investigación fitopatológica.
Costa Rica. 289 pp.
COLECCIÓN Y REMISIÓN DE MUESTRAS PARA ANÁLISIS NEMATOLÓGICO
Los fitonemátodos pueden ser hallados en el suelo o dentro del hospedante, por ello para efectuar el diagnóstico es necesario tener en cuenta ciertas consideraciones para la elección y remisión de muestras para análisis nematológico.
I. ELECCIÓN Y COLECCIÓN DE LA MUESTRA
1. Eliminar los primeros 5 cm de la superficie del suelo de 1ha del fundo agrario.
2. Colectar porciones de suelo o vegetal, tomados al azar dentro de 1 ha, hasta completar 1 kg de suelo.
3. La profundidad de muestreo es hasta la capa arable, es decir de que la muestra debe ser tomada hasta 20 -30 cm de la superficie del suelo.
4. La colección de la muestra puede ser tomada de un terreno sin cultivo o en cualquier época de desarrollo del cultivo (Por ej. maíz) en un terreno cultivado.
5. Para la colección de plantas se extrae aquellas que se sospecha estén atacadas por nematodos (plantas poco desarrolladas, deformes, marchitas, otros.).
II. CONDICIONES DE REMISIÓN
1. El material muestreado será colocado dentro de una bolsa de polietileno, asimismo, se incluirá una etiqueta conteniendo la información necesaria, escrita con lápiz.
2. La bolsa con el material colectado debe ser sellado y colocado dentro de otra bolsa, se colocará otra etiqueta con los mismos datos que en la anterior.
3. Colocar las muestras en forma ordenada en una caja. Evitar el calentamiento y resecado de las muestras.
4. Enviar el paquete por vía de transporte, de modo que lleguen en días laborables y lo más pronto posible. Si no puede enviarlas inmediatamente guarde las muestras de suelo en refrigeración (4° C) hasta el momento del envío.
5. Marque los paquetes a nombre del Laboratorio de Biología o Fitopatología, Universidad Nacional Pedro Ruíz Gallo, Lambayeque, UNALM u otro laboratorio.
III. INFORMACION QUE SE DEBERÁ ACCEDER A LAS MUESTRAS
1. Marque las etiquetas con lápiz mongol de carbón, no use lapicero,
2. Cada etiqueta debe llevar la información siguiente:
a. Finalidad del muestreo
b. Fecha
c. Cultivo muestreado, cultivo anterior y cultivo por sembrar.
d. Lugar de muestreo, nombre del fundo, propietario y ubicación geográfica.
e. Otros datos, por ejemplo; uso de abonos orgánicos, fertilizantes, nematicidas, herbicidas, insecticidas, y otros.
SINTOMAS Y SIGNOS DE LAS ENFERMEDADES DE PLANTAS
Enfermedad. - Es toda alteración bioquímica y fisiológica que se produce en el normal funcionamiento de una planta.
Síntoma. - Es la manifestación de la planta enferma en forma notoria, puede ser detectada a través de la vista, gusto, tacto, olfato, otros. Una enfermedad se expresa a través de una diversidad de síntomas, los que se pueden combinar para formar síntomas más complicados.
Signo. - Es la presencia visible del patógeno, bien sea en la forma de una estructura vegetativa, reproductiva o de conservación. Ejms mildium, oidío, exantema, roya.
Síndrome o cuadro. - Es el conjunto de síntomas y signos de una enfermedad, que permiten la diagnosis de la misma. Ejemplo la “rancha”, el “arrosetammiento” y la “fusariosis”.
Clasificación de síntomas. - Los síntomas se clasifican de acuerdo a los siguientes criterios observados en el cultivo instalado en campo o invernadero:
a. Generales: cuando comprometen en forma total al cuerpo de la planta. Ejemplo: marchitez, secamiento, enanismo, amarillamiento.
b. Locales: cuando se manifiestan en forma de cambios estructurales y/o fisiológicos de un área limitada del tejido del hospedante. Por ejemplo: clorosis, nódulos, cancros, quebradura de la nervadura principal en hoja de maíz morado, lesiones, otros.
a. Síntomas Primarios: cuando son el resultado de la acción directa del patógeno sobre el tejido invadido. Ejemplo: necrosis de un patógeno fúngico radicular.
b. Síntomas Secundarios: cuando son el resultado de efectos fisiológicos originados por el patógeno en órganos distantes y no invadidos por él. Por ejemplo: La marchitez originada por la necrosis del sistema radicular, o cuando es el resultado de la acción de un organismo saprofito que actúan después de que el patógeno principal inicia su efecto.
a. Síntomas microscópicos: son las alteraciones que solo es posible estudiarlas por el uso de técnicas histológicas y con ayuda del microscopio.
b. Síntomas macroscópicos: son aquellos síntomas que se pueden observar a simple vista y que se desarrollan en toda la planta o parte de ella. Estos se dividen en:
A. Pre necróticos
B. Necróticos
C. Atróficos
D. Hipertróficos
E. Complejos o especiales
A. A. SÍNTOMAS PRE NECRÓTICOS: Síntomas que preceden a la muerte de la célula
1. Marchitez: pérdida de turgencia de las hojas y brotes generalmente debido a patógenos que afectan al tejido vascular o radicular.
2. Enrojecimiento: son áreas de color rojo o marrón rojizo que proceden a la necrosis, o bordes de igual coloración que preceden al avance de una necrosis central, ejemplo: “sigatoka” del plátano, el “damping off” en Fabaceae.
3. Amarillamiento: pérdida de color verde normal, debido a la desorganización protoplasmática que procede a la muerte de los tejidos; ejemplo: las manchas amarillentas de los mildius afelpados y polvorientos.
B. SÍNTOMAS NECRÓTICOS: Son síntomas caracterizados por la muerte de las células de los tejidos botánicos.
1. Pudrición: condición de desintegración de los tejidos; la pudrición puede ser seca, blanda, aromática, fétida y húmeda.
2. Abolladuras: muerte de tejidos suculentos justo debajo de la epidermis de frutos, tubérculos u órganos similares, dando como resultado depresiones en su superficie.
3. Momificación: es la deshidratación de los tejidos muertos de órganos carnosos que no es seguida por ataque de organismos secundarios.
4. Dieback o muerte regresiva: es una necrosis descendente que se inicia en la parte apical de ramas y ramillas.
5. Chupadera o damping off disease: son lesiones hundidas de color marrón rojizo ubicadas a la altura del cuello de las plántulas produciendo a menudo el tumbado.
a). Chupadera o damping off pre emergente. - las semillas se pudren antes de tomar la parte aérea. Ejm. Fusariosis, rizoctoniosis
b). Chupadera o damping off post emergente. - las semillas germinan, crecen y después de alcanzar la parte aérea, recién son afectadas por los patógenos del suelo. Lo ocasionan Rhizoctonia, Sclerotinia, Pythium, Phytopthora y Fusarium asociado siempre a los nematodos. El control se hace con PCNB, Dexon, Carbamatos (Farbam, Dithane, Rhizoctol, otros).
6. Cancros: son lesiones hundidas, de borde generalmente suberificado, que se presentan en el tejido cortical y adyacente de ramas y ramillas, frutos, raíces y tubérculos.
7. Mancha necrótica: son áreas de tejido necrótico de forma, color y tamaño variable, que se presentan más comúnmente en hojas. Cuando son limitados por nervaduras se llaman manchas necróticas angulares.
8. Escaldaduras: lesiones necróticas a manera de ampollas en los que el tejido el tejido se muestra generalmente hundido y la epidermis levantada. Son de color blanquecino y se presentan con frecuencia en tejidos delicados de tallos, hojas y frutos.
9. Anillo necrótico: son necrosis de forma circular, formando a veces anillos concéntricos sucesivos. Necrosis en tabaco.
10. Estría necrótica: manchas necróticas dispuestas en líneas paralelas. Por ejemplo, estrías necróticas en hojas de maíz.
11. Quemaduras: manchas necróticas que abarcan áreas más o menos extensas y son causados por agentes físicos o químicos. En la mayoría de los casos las áreas necróticas abarcan el ápice y los bordes de las hojas.
12. Perforación: son agujeros que se producen en las hojas como consecuencia del desprendimiento del tejido muerto de las manchas necróticas.
13. Cuarteaduras: se presentan sobre los frutos, ramas, tallos, por stress, sequia o causas fisiológicas, mal manejo de riego de agua o por patógenos (Oídium sp.) en melón, papayo, mango o cucurbitáceas.
14. Lesiones foliares y del tallo: se observan especialmente en hojas, son áreas necróticas de forma, color y tamaño variable muy común en los tallos de diversos cultivos, causados por virus, bacterias y hongos. Ejemplos: Lesiones por la mancha carmelita (Helminthosporium oryza), el quemadoo bruzone (Pyricularia oryzae), la cercosporiosis (Cercospora apii) y lesiones Glomerella cingulata.
15. Corcho: son lesiones hundidas cuya superficie color canela penetran hasta 4 mm.
16. Pústulas, soluciones de continuidad o royas: son soluciones de continuidad producidas por la rotura de la epidermis, como consecuencia de la presión interior ocasionada por el desarrollo de uredosporas y teliosporas de algunos hongos Uredinales en los Triticales: Puccinia hordei, Puccinia graminis.
C. SÍNTOMAS DE ATROFIA: Son síntomas caracterizados por subdesarrollo de órganos o de un carácter que no sea tamaño, tal como la sub producción de clorofila.
a. Sub producción de clorofila: es la falta del color verde normal en los órganos de una planta, esta deficiencia toma el nombre genérico de clorosis, pudiendo variar del color verde claro al amarillo y algunas veces blanquecino.
1. Aclareo: cuando la clorosis se encuentra ubicada en las zonas comprendidas entre las nervaduras.
2. Estrías cloróticas: es una forma de aclareo en hojas de fabáceas, en donde la clorosis se presenta en forma longitudinal y paralela a las nervaduras.
3. Manchas cloróticas: cuando la clorosis se presenta en forma de manchas más o menos circulares.
4. Anillo clorótico: cuando la clorosis se presenta en forma anular.
5. Aclareo de nervaduras: cuando la clorosis se presenta solo en las nervaduras.
6. Amarillamiento: si la clorosis afecta grandes áreas del limbo o abarca toda la hoja.
7. Mosaico: Son manchas cloróticas irregulares distribuidos desuniformemente en el área foliar que alternan con el verde normal de la hoja.
8. Clorosis: es la ausencia de color verde normal de las hojas, una parte o en todo el follaje de la planta. Ejemplo el virus mosaico de la alfalfa (AMV).
9. Enanismo: es la disminución del tamaño por causa de patógenos o agentes abióticos o por ataque del CMV o de nematodos; Aunque puede ser una mutación o por autofecundación.
10. Epinastia: las hojas se disponen en ángulo de 90° en relación al tallo, como sucede en el ají afectado por fusariosis.
11. Achaparramiento/arrosetamiento: es un acortamiento de entrenudos, dando la planta el aspecto de arrosetamiento. Se ha revelado que se trata de falta de potasio y de la presencia de virus.
12. Defoliación: se trata de la caída de las hojas, flores y frutos recién formados por formación prematura de zonas de abscisión por acción del AIA. Ejemplo: Potyvirus (PVY), tobacco streack virus (TSV).
13. Ahusamientos: los brotes tiernos toman las formas de un husillo. Ejemplo el viroide PSTV.
14. Vidriados o “manzanas heladas”: se presenta por el relleno con savia de los espacios intercelulares.
15. Foliocelosis: es un variegado de las hojas, con áreas fuertemente cloróticas en los espacios intervenales que destacan sobre el resto de color verde normal, reducción de la hoja. Aunque es probable que la planta necesite cal o materia orgánica, pero un abuso de nitrato sódico puede evidenciar este síntoma.
16. Envanamiento o esterilidad: se presenta en los granos de las espigas o en panículas de los cereales, la falta del endospermo y solo se encuentran las glumas vacías.
b. Sub-desarrollo de Órganos:
1. Arrosetamiento: es la disposición de tallos y hojas dando el aspecto de una roseta, como consecuencia del acortamiento de los entrenudos.
2. Enanismo: falta de desarrollo. Toda la planta o parte de ella de ella no alcanza el tamaño normal de la especie.
3. Defoliación: caída de hojas. No hay que confundir este síntoma con la característica normal de ciertas plantas caducifolia.
4. Aborto: caída de flores y frutos en formación.
D. SÍNTOMAS HIPERTRÓFICOS: Se caracterizan por un desarrollo excesivo de tejidos orgánicos y pueden presentarse en la forma de:
1. Escoba de brujas: es la proliferación anormal de raíces, tallos o pedúnculos florales a partir de una gema.
2. Sarna: Son lesiones más o menos circulares o ligeramente levantadas, resquebrajadas o corchosas, se presentan en la superficie de los frutos, hojas, tallos, tubérculos y raíces.
3. Abarquillamiento: es lo contrario del caso del encrespamiento, el parénquima del limbo crece a ritmo más o menos normal, no así las nervaduras lo que da lugar a que se doble para arriba tomando como base la nervadura central.
4. Encrespamiento: es cuando el limbo presenta una conformación arrugada debido a que las células del parénquima de la hoja se hipertrofian, pero las nervaduras conservan su conformación anterior.
5. Fasciación: anormalidad consistente en la unión de dos o más tallos o pedúnculos los que se sueldan en toda su longitud.
6. Frondescencia: transformación más o menos completa de las piezas de los verticilos florales, en órganos verdes de estructura y aspecto foliáceo.
7. Tumor/agallas, verrugas, nódulo: son hinchazones o abultamientos debido a la proliferación y/o aumento del tamaño de las células que conforman los tejidos.
8. Callo: es un tejido de cicatrización generalmente suberificado que se forma al borde de un cancro o herida.
9. Escoba de brujas (Witches’ broom): proliferación de órganos que se originan de una misma yema en caso de ramas y flores. Ejemplo Marasmius perniciosus en cacao.
10. Hernia: son hipertrofias presentes en la raíz de col, la cual se ve afectada como es el caso del patógenos: Plasmodiophora brassicae.
E. SÍNTOMAS ESPECIALES O COMPLEJOS: Son cuando debido a su naturaleza no se les puede ubicar dentro de los síntomas pre necróticos, necróticos, atróficos o hiperplásicos ya sea por no estar dentro de uno de ellos o por participar de varios de estos síntomas.
1. Tubérculos aéreos: producción de tubérculos en la parte aérea debido generalmente a una lesión o estrangulamiento a la altura del cuello, lo que dificulta o impide la translocación de sustancias de reserva a los órganos de almacenamiento que son los tubérculos. Ejemplos: rizoctoniasis y enfermedades pos Fitoplasmas.
2. Exudación: secreción de gomas, resinas o látex por causas parasitarias o no parasitarias. Cuando en el líquido exudado se encuentra el patógeno bacteriano en suspensión constituye un signo.
3. Descortezamiento: levantamiento, cuarteamiento y desprendimiento del tejido cortical de troncos y ramas.
4. Virescencia/verdeamiento: Es la visualización de color verde en órganos en los que normalmente no se sintetiza la clorofila.
Ejemplo: los tubérculos de la papa, pétalos, y los frutos.
5. Deformación de órganos: es una alteración de la forma normal de un órgano y se produce cuando hay la participación simultánea de varios síntomas de un mismo órgano.
6. Enrollamiento apical: es cuando la hoja teniendo como eje longitudinal la nervadura principal adopta la forma más o menos cilíndrica.
7. Antocianescencia/Cromosis: es la coloración anormal violácea o rojiza oscura de órganos tal como hojas y otros, debido a la producción anómala de pigmentos de antocianina.
8. Rugosidad: alteración en la cual se notan pliegues o arrugas en las láminas de las hojas o en los frutos.
SIGNOS DE LA ENFERMEDAD EN UNA DETERMINADA PLANTA
Los signos de una enfermedad lo constituyen el patógeno causante de la misma, el que puede estar presente en una de las diversas formas que a continuación se enumera:
a. Esclerocios: estructuras de conservación de los hongos que tienen forma redondeada o achatada, de consistencia dura y de color negro o marrón y están formados por hifas cortas frecuentemente muy soldadas entre sí, ricos en reservas y susceptibles de pasar a vida latente.
b. Exudaciones: están constituidos por secreciones de la planta en forma de cera o gomas y que generalmente encuentra entremezclada con estructuras propagativas de hongos (esporas). En caso de enfermedades producidas por bacterias las exudaciones son de apariencia ceroso como una especie de cera contiene una gran cantidad de células.
c. c. Espuma/fermentación: en tubérculos de papa almacenados a temperatura alta y oscuridad.
d. d. Esporas/micelio/haustorio/himenio: son estructuras reproductivas y vegetativas propias de los hongos. Tienen diversidad de formas y septos, y el micelio es de apariencia algodonosa o en forma de tela de araña y está constituida por una serie de filamentos de color blanquecino, gris, amarillo, plomizo o diferentes tonos de marrón. Los haustorios son los órganos de absorción y se observa en cortes histológicos de órganos de la planta in vivo y el himenio es una estructura macroscópica cargada de micelio muy consistente.
e. Conidias y oidiosporas: son estructuras reproductivas y propagativas que generalmente forman agrupaciones o fructificaciones que tienen características especiales. Así tenemos:
f. Royas: presentan como signo estructura denominadas soras que contienen gran cantidad de esporas y que pueden ser de color amarillo, rojizo-anaranjado o marrón oscuro, Son propias de hongos Uredinales y se les encuentra especialmente sobre los tallos y hojas.
g. Carbones: son una masa pulverulenta de color marrón o negruzco, constituido por masas de esporas y micelio de los Ustilaginales. Generalmente el almidón o en órganos de reserva como los choclos del maíz amarillo blanco o amarillo duro.
h. Mildius: se manifiestan en el envés de las hojas y tallos en forma de una pelusilla aterciopelada de color blanco, plomizo o violáceo, esta pelusilla aterciopelada de color gris o blanco está constituida por esporangióforos y esporangios de los hongos Peronosporales.
i. Oídiums.- es una especie de polvillo blanco grisáceo constituido por micelio, oidióforos y oidias de los hongos Erysiphales. Se le encuentra en cualquier parte aérea de las plantas y puede hacerse presente en ambas caras de las hojas.
j. Fumagina.- este signo se observa como una especie de “costra” de color negro o marrón oscuro. Esta costra está constituida por el micelio y esporas de hongos de los géneros Capnodium y Fumago que recubren tallos, hojas, peciolos, pétalos y frutos de plantas que han sido previamente parasitados por áfidos o queresas, porque el hongo epifito rara vez vive a expensas de la planta y utiliza las secreciones azucaradas de las queresas.
k. Moho: es un signo formado por masas de esporas y micelio de hongos Aspergillus, Penicillium, Rhizopus y Mucor que comprometen especialmente frutos suculentos o secos. El signo se distribuye en forma circular con una coloración azul, verde o marrón de acuerdo al organismo causante.
ENFERMEDADES ABIÓTICAS EN LAS PLANTAS
Son desordenes fisiológicos de origen no parasitario, puesto que son causados por factores inanimados y por lo tanto no son fácilmente transmisibles.
Las enfermedades abióticas se deben fundamentalmente a condiciones adversas del ambiente en el cual desarrolla la planta y actúa en forma individual o en interacciones inter o intra especificas provocando “síntomas complejos” de difícil determinación. Las plantas se desarrollan parte en el ambiente del suelo y parte en la atmósfera.
En la Atmósfera los factores abióticos importantes son:
Si las temperaturas son muy altas producen quemaduras y ampolladuras (elevación local de la epidermis por acumulación de líquidos), ambos síntomas son de tipo necrótico. Si las temperaturas son muy bajas provocan la formación de cristales de hielo tanto dentro de las células como en los espacios intercelulares (“heladas”).
Si la humedad relativa de la atmósfera es muy baja (40%), es importante sobre todo cuando hay interacción con la temperatura alta (34ºC), en cuyo caso se producen marchiteces.
La deficiencia de la luz solar produce síntomas de clorosis, etiolación, alargamiento de los entrenudos, caída de las flores y otros síntomas.
d. Lluvia, el viento, la nieve y el granizo tienen un efecto mecánico como tumbado de plantas. También ocasionan el quebrado de nervaduras de hojas, tallos, rotura y perforación de hojas, y caída de hojas, flores y frutos.
e. Los rayos, los relámpagos y los truenos tienen una acción directa en forma de quemaduras y provocan distorsión de los tallos.
f. f. Temperaturas frías, y altas, y la falta de aeración en almacenes producen necrosis.
g. g.. Presión atmosférica a una menor presión atmosférica daría lugar a una menor apertura de las estomas, una menor cantidad de C02 disponible para el cultivo, menor fotosíntesis y por ello una menor nutrición de la planta.
h. h. Contaminación ambiental en la forma de gases de invernadero, gases carburantes, hidrocarburos de petróleo y residuos de fábricas produce quemaduras y defoliación.
En el Suelo, entre otros factores que son importantes para la planta tenemos:
a. Humedad del Suelo, ya sea deficiente o excesiva provoca síntomas de marchitez. El mal manejo del riego provoca rajaduras en frutos y tubérculos.
b. Textura y estructuras inadecuadas inducen malformación de órganos subterráneos, rotura de raíces y crecimiento pobre de las plantas.
c. pH del suelo tiene efecto sobre la disponibilidad de elementos que intervienen en la nutrición de la planta.
d. Composición química del suelo en relación con los elementos que necesita la planta para su desarrollo, la deficiencia de los cuales puede provocar alteraciones y
síntomas complejos.
e. Agroquímicos mal aplicados, pueden incitar quemaduras, encrespamientos y malformaciones en diferentes órganos de la planta tanto aéreos como en los subterráneos.
VIRUS FITOPATÓGENOS
Los virus son entidades infectivas submicroscópicas que se multiplican únicamente en el hospedante. Los virus causan en las plantas una serie de síntomas a veces complejos, que en muchos casos pueden ser confundidos por otras causas. Sin embargo, muchos de ellos a diferencia de otros patógenos vegetales pueden provocar síntomas locales y generalizados. También tienen la particularidad de que un mismo virus puede inducir síntomas diferentes en hospedantes diferentes.
I. Los síntomas locales: son aquellos que se manifiestan alrededor del punto por donde la partícula viral penetró.
Manchas cloróticas: Ejemplo: TMV (Tobacco Mosaic virus) en Chenopodium quinoa
Manchas necróticas. Ejemplo: TMV en Nicotiana glutinosa
Anillos cloróticos: Ejemplo: PVX (Potato virus X) en Chenopodium amaranticolor.
Anillos necróticos: Ejemplo: TRSV (Tobacco ring spot virus) en Nicotiana tabacum.
II. Síntomas generales: Son del tipo sistémico, es decir se manifiestan en toda la planta o gran parte de ella sin considerar el punto por donde penetró el virus.
a. Enanismo: Podría ser un crecimiento pobre de toda la planta o de algunas de sus partes. Este síntoma es uno de los más comunes en enfermedades causadas por virus.
b. Amarillamiento: No son muy numerosos los virus que causan este síntoma. Ejemplo: TRSV en Nicotiana tabaccum
c. Manchas cloróticas: Ejemplo CMV en pepinillo
d. Estrías cloróticas. Ejemplo: CMV en achira
e. Mosaicos: Este síntoma significa la alternancia de color verde claro y oscuro en hojas o la alternancia de zonas más coloreadas o menos coloreadas en frutos y flores. Es otro de los síntomas más comunes ya que la mayoría de los virus tienden a presentar mosaico. Ejemplo: TMV produce mosaico en plantas de tomate y frutos con áreas des pigmentadas. TBV (Tulip breaking virus) produce la variegación de flores de tulipán.
f. Anormalidades: En sus siguientes formas:
- Hoja coriácea: Ejemplo: PLRV en papa.
- Tumores: Ejemplo: WTV (Wound tumor virus) en trébol.
- Deformaciones: Bien sea en reducción de partes del limbo. Ejemplo: CMV que produce hojas filiformes en Nicotiana glutinosa o como retorcimiento de hojas. Ejemplo: TMV en tomate.
- Enrollamiento: Ejemplo: PLRV (Potato leaf roll) en papa.
- Epinastia o alteración en el ángulo de inserción: en cuanto a la unión de una hoja y el ángulo de inserción de los pedúnculos con el tallo puede ser mayor de 180°.
Ejemplo: TMV en ají.
- Encrespamiento: Ejemplo: TVMV (Tobacco vein mottle virus) en Nicotiana occidentalis, PVX más PVY en papa.
g. Necrosis: Puede presentarse en sus formas de:
- Estrías necróticas: Ejemplo: CMV en plátano
- Necrosis generalizada: que se inicia desde el ápice de la planta y avanzar hacia abajo como en el caso de TRSV en Vigna sinensis, o comenzar de la base de la planta y avanzar hacia arriba como con PVY (Potato virus Y) en papa.
- Anillos necróticos: Ejemplo: TRSV en Nicotiana tabacum
- Manchas necróticas: Ejemplo: PVY en papa.
BACTERIAS FITOPATÓGENAS
Las bacterias son patógenas procariotas unicelulares que se multiplican por división binaria y que pueden producir enfermedades del tipo vascular, parenquimatosa o hiperplasia.
Enfermedades vasculares: se producen cuando hay obstrucción del sistema vascular por la reproducción de bacterias en estos tejidos y por la producción de ciertas sustancias por parte de la bacteria lo que impide el libre fluido de los solutos dentro de la planta.
El síntoma típico de marchitez por oclusión de vasos se presenta en las infecciones producidas por
Ralstonia solanacearum.
Los géneros Erwinia, Ralstonia, Xanthomonas generalmente también producen estos síntomas.
Enfermedades hiperplasias: se caracterizan por la formación de agallas, tumores y nódulos o por la formación de órganos adicionales a partir de yemas adventicias. Los géneros Agrobacterium y Rhizobium producen este tipo de afecciones.
Tabla 1:
Especies bacterianas y las enfermedades que producen sobre los cultivos
Especies bacterianas | Enfermedades que causan |
Ralstonia solanacearum - raza 2 | |
Pseudomonas savastonoi | Tuberculosis del olivo |
P. phaseolicola | Hielo amarillo del frijol |
Xanthomona malvacearum | Mancha angular del algodonero |
X. phaseoli | Tizón común del frijol |
X. rubrilineans | Raya roja en caña de azúcar |
Erwinia stewartii | |
E. caratovora var. carotovora | Pudrición en hortalizas |
E. cartovora var. atroseptica | Pierna negra de la papa |
A. tumefaciens | Agalla de la corona, frutales de hueso y vid |
A. radiobacter pv. tumefaciens | |
| |
| |
| |
| |
PRÁCTICAS N° 7, 8
ENFERMEDADES CAUSADAS POR HONGOS
Los hongos son organismos de gran importancia económica, pues muchos de ellos causan enfermedades muy serias en plantas cultivadas.
El cuerpo de los hongos está constituido por filamentos ramificados denominados hifas, que en conjunto forman el micelio o estructura vegetativa.
Los hongos son considerados como plantas inferiores y están incluidos dentro de la división Mycota que comprende 2 subdivisiones: Myxomycotina y Eumycotina.
No poseen micelio, la estructura vegetativa la constituye el plasmodio, el que a la madurez da origen a los esporangios que constituyen esporas. Cada espora al germinar deja en libertad zoosporas biflageladas.
Estructura vegetativa: plasmodio que se desarrolla dentro de un hospedante.
Estructura propagativa: por ejemplo, las zoosporas con dos flagelos desiguales, en forma de látigo. Las zoosporas pueden actuar como gametos.
Orden Plasmodiophorales
Familia Plasmodiophoracea
Especies:
1. Plasmodiophora brassicae
Enfermedad: “Hernia de la col”
Síntomas: Agallas en el cuello de las plantas y las raíces.
2. Spongospora subterránea
Enfermedad: “Roña o sarna pulverulenta en la papa”
Síntomas: Presencia de pústulas en forma de cráteres en la superficie de los tubérculos.
Son los hongos verdaderos. Las formas más primitivas carecen de micelio, pero las más evolucionadas poseen micelio bien desarrollado, el que puede ser cenocítico o septado.
Estructura vegetativa: carecen de micelio o de existir es muy rudimentario (rhizomicelio).
Estructura reproductiva: zoosporas uniflageladas que actúan como gametos.
Enfermedad: “verruga de la papa”
Síntomas: Tumores grandes de
forma irregular sobre los tubérculos.
Especie: Physoderma zea-maydis
Enfermedad: “Mancha parda del
maíz”
Síntomas: Manchas cloróticas en las hojas y color castaño oscuro en la
nervadura central, nudos y entrenudos.
Especie: Physoderma alfalfae (Uroplyctis alfalfae)
Enfermedad: Agalla de
la corona de la alfalfa
Síntoma: Agallas blanca a gris parduzca en el cuello de la planta.
Estructura vegetativa: micelio cenocítico bien
desarrollado.
Estructura
propagativa: esporangios que pueden germinar dejando
en libertad zoosporas biflageladas uno en forma de látigo y el otro en forma de
plumilla o directamente produciendo micelio.
Estructuras reproductivas: tienen heterogametos, oogonio o
gametangio femenino que contiene la oosfera (gameto femenino) y el anteridio o
gametangio masculino contiene los anterozoides
que son los gametos masculinos. La unión de los gametos
de origen a la oospora (zigoto).
Familia:
Saprolagneaceae Especie: Aphanomyces
euteiches
Enfermedad:
Pudrición negra de la raíz de la arveja y haba Síntoma: Pudrición radicular
Familia Pythiaceae
Se
caracteriza porque la hifa y los esporangióforos son bastante semejantes. Los
esporangióforos tienen crecimiento indefinido.
Genero Pythium:
El
esporangio puede formar una vesícula donde termina de desarrollarse las
zoosporas.
Especies: Pythium debaryanum
Enfermedad: “chupadera fungosa”, pudriciones, varios Hospedantes: Especie: Pythium
ultimun
Enfermedad: “chupadera fungosa”, pudriciones, varios hospedantes.
Síntomas: Pudrición en raíces, tallos y frutos, chupadera fungosa.
Género Phytophthora:
El esporangio forma las zoosporas en la que no hay la
formación de vesículas.
Tabla 2.
Especies fungosas y
las enfermedades que producen sobre los cultivos
|
Especies
|
Enfermedades
|
|
Phytophthora infestans
|
“Mildiu”, “hielo” o “rancha”, lancha,
|
|
|
“Pudrición” en raíces, tubérculos,
manchas necróticas afelpadas en hojas.
|
|
Phytophthora capsici
|
“Pudrición radicular” Capsicum
|
|
Phytophthora palmivora
|
“Pudrición del fruto” del cacao
|
|
Phytophthora cinnamomi
|
“Pudrición radicular” del palto
|
|
Phytophthora erytroseptica
|
“Pudrición rosada” papa
|
|
Phytophthora parasitica
|
“Gomosis” de los cítricos.
|
|
Phytophthora megasperma
|
“Pudrición “ de las raíces de
Brassicaceae
|
|
Phytophthora cactorum
|
“Pudrición” del pepino y calabaza
|
|
|
|
|
Phytopythium spp.
|
“Pudrición” en papa y varios cultivos
|
En
este grupo existe diferencias morfológicas entre la hifa y los esporangióforos,
de crecimiento definido, son cortos gruesos, claviformes. A partir de los
esporangióforos se forman los esporangios en cadenas.
Especie:
Albugo candida
Enfermedad: “Roya
blanca” de las crucíferas
Síntomas: Pústulas
de color blanquecino localizadas en el envés de las hojas.
Los esporangióforos
son bien características, de crecimiento definido. Presentan ramificaciones
sobre la que se forman esporangios individuales. B.
lactucae presenta síntomas de manchas cloróticas en el haz
y en el envés presencia de una pelusilla blanquecina formada por
esporangióforos y esporangios.
Tabla 3.
Especies
Peronosporaceae y las enfermedades que producen sobre los cultivos
|
Sclerospora macrospora
|
“Mildiu” Caña de azúcar
|
|
Plasmopora viticola
|
“Mildiu de la vid”
|
|
Peronospora effusa
|
“Mildiu” quinua, espinaca
|
|
Peronospora destructor
|
?
|
|
Peronospora parasitica
|
“Mildiu” de la col
|
|
Peronospora trifoliorum
|
“Mildiu” de la alfalfa
|
|
Pseudoperonospora cubensis
|
“Mildiu de la cucurbitaceae
|
|
Bremia lactucae
|
“Mildiu” de la lechuga
|
Estructura vegetativa: Micelio
cenocítico
Estructura reproductiva: la reproducción sexual se realiza por la fusión de porciones de hifa
que actúan como gametos y dan como resultado la formación de una zygospora.
Especies:
Rhizopus nigricans Rhizopus
stolonifer
Síntomas:
Pudrición húmeda en órganos carnosos como el camote y frutos como fresas,
melocotón, chirimoya.
PRÁCTICA 09
Esta clase-forma incluye un gran número de patógenos que
afectan a diversos cultivos. Existen unas 15.000 especies. Presentan hifas
septadas que puede fragmentarse y originar conidias. Las estructuras
propagativas están constituidas por conidióforos en cuyo ápice se insertan las
conidias. Estos pueden ser libres o agrupados formando esporodoquios y synemas,
o hallarse dentro de cuerpos fructíferos denominados picnidios y acérvulos.
Estructura de
reproducción sexual, están consideradas en otras
clases, pudiendo recaer en: Zygomycetes, Ascomycetes y Basidiomycetes.
Las especies en Deuteromycetes
se incluyen en tres grupos: 1. Blastomycetes,
presentan un soma formado por células con aspectos de levadura, con o sin
seudomicelio, si tienen micelio verdadero nunca está bien desarrollado. 2. Coelomycetes, hongos con micelio
septado bien desarrollado que se reproducen mediante conidios que se forman en
picnidios o acérvulos; y el grupo 3. Hyphomycetes,
son hongos con hifas septadas bien desarrolladas y los conidios nunca están
dentro de picnidios ni acérvulos.
Orden-Forma Moniliales. -
Familia-Forma Moniliaceae: Los conidióforos y conidias son hialinos.
Tabla 4.
Especies Moniliaceae y las enfermedades que producen sobre los cultivos
|
Especies
|
Enfermedad
|
|
Botrytis
cinerea/Botryotinia fuckeliana
|
“Pudrición gris” en arándano y naranjo
|
|
Verticillium
albo-atrum
|
“Marchitez” del algodonero
|
|
Monilia
fructicola
|
“Pudrición del fruto” melocotonero
|
|
Oidium
spp.
|
“Oidiosis” polífago
|
|
Geotrichum
candidum
|
“Pudrición” Tomate, melocotonero
|
Familia - Forma Demateaceae: Los conidióforos y conidias son oscuros.
Tabla 5.
Especies Demateaceae y las enfermedades que
producen sobre los cultivos agrícolas
|
Especies
|
Enfermedad
|
|
Pyricularia
oryzae
|
“Quemado”, “quema”, “bruzone” en arroz
|
|
Cercospora
coffeicola
|
“Mancha foliar” del cafeto
|
|
Thielaviopsis
basicola
|
“Podredumbre radicular” del algodonero
|
|
Stemphyllium
botryosum
|
“Moho foliar” en cebolla
|
|
Bipolaris
turcicum
|
“Mancha foliar” en maíz
|
|
Alternaria
alternata
|
“Mancha foliar” algodonero
|
|
Alternaria
solani
|
“Alternariosis”, “Tizón temprano” en papa
|
|
A.
brassicae
|
“Alternariosis”,“Tizón temprano” en papa
|
|
A.
dauci
|
“Alternariosis”, “Tizón temprano”, papa
|
|
A.
tenuis
|
“Alternariosis”, “Tizón temprano”, papa
|
|
A.
tenuissima
|
“Alternariosis”, “Tizón temprano”, papa
|
Familia - Forma Stilbaceae: Los conidióforos forman un synema
Especie: Isariopsis clavispora
Enfermedad: “Mancha foliar” – vid
Familia- Forma Tuberculareaceae: Los conidióforos forman
esporodoquios.
Especie: Fusarium moniliforme,
F. lini, F. solani
Enfermedad:
“Chupadera fungosa”, “Pudrición radicular”, varios hospedantes
Síntomas: Las especies de esta familia pueden causar
pudriciones, marchitez, manchas foliares y damping off o “chupadera fungosa”.
Fusarium oxysporum f. sp. cubense Raza T Foc. “Mal de Panamá”,
“Fusariosis”, “Pudriciones radiculares”
Grupo
Coelomycetes
Orden
- Forma Sphaeropsidales /Phomales
Los conidióforos y conidios se hallan dentro de un
cuerpo fructificante en forma de botella que recibe el nombre de Picnidia.
Familia
- Forma Sphaeropsidaceae.- Posee picnidia de color oscuro, con ostiolo
definido, conidióforos cortos hialinos.
Tabla 6.
Especies
Demateaceae y enfermedades que producen sobre los cultivos agrícolas
|
Especies
|
Enfermedad
|
|
Ascochyta
pisi
|
“Antracnosis” arveja
|
|
Septoria
apii
|
“Mancha foliar” apio
|
|
Diplodia
natalensis
|
“Gomosis de las ramas” - naranjo
|
|
Diplodia
zeae
|
“Pudrición seca de maíz”
|
|
Dendrophoma
sp.
|
“Manchas foliares” color purpura.
|
|
Macrophomina
phaseolina
|
“Podredumbre carbonosa”
|
|
Phoma
cactorum
|
“Pudrición” en cactus
|
|
Phomopsis
citri
|
“Melanosis”, “Cancro gomoso” cítricos
|
|
Phyllosticta
phaseolina
|
“Mancha foliar” y en legumbre frijol.
|
|
Lasidiploidia
(Botryodiplodia) theobromae
|
“Muerte regresiva” mango, palto, cítricos y
otros cultivos hortofrutícolas.
|
|
Pyronochaeta
terrestris
|
“Raíz rosada” - cebolla
|
|
Septoria
graminnicola, S. nodorum
|
“Manchas” ,“lesiones” en cultivos: ?
|
|
Leptosphaeria
nodorum
|
“Manchas”, “lesiones” en ?, fase:?
|
|
L.
microscópica
|
?
|
|
L.
avenaria
|
?
|
Orden - Forma Melanconiales.- Los conidióforos y conidias se
encuentran en un cuerpo fructificante en forma de plato denominado “acérvulo”.
Las conidias están reunidas en una masa mucilaginosa, a veces es posible
observar alrededor o entre la masa de esporas las estructuras largas, gruesas
oscuras (setas).
Familia - Forma Melanconiaceae. - Los acérvulos presentan
color blanco, crema, anaranjado, negro. Los cuerpos fructififeros se
desarrollan debajo de la cutícula o epidermis del hospedante y generalmente
irrumpen a la madurez.
Tabla 7.
Especies de
Melanconiaceae y las enfermedades que producen sobre los cultivos agrícolas
|
Especie
|
Enfermedad
|
|
Gloesporium
orbiculare
|
“Mancha del fruto” Cucurbitaceae
|
|
Colletotrichum
lindemuthianum
|
“Antracnosis”, “Antracnosis” Frijol
|
|
Pestalotia
guepini
|
“Mancha foliar”, “Antracnosis” parte aérea
en palto.
|
Orden - Forma Mycelia Sterilia. - No poseen conidias, sin estructuras
sexuales.
Tabla 8.
Especies de
Mycelia Sterilia y enfermedades que producen en los cultivos agrícolas
|
Rhizoctonia
solani
|
“Chupadera” Varios cultivos
|
|
Sclerotium
rolfsii
|
“Pudrición del cuello”, “Pudrición basal”
Varios cultivos
|
|
S.
oryzae
|
“Pudrición basal” en cultivo de arroz
|
|
S. cepivorum
|
“Pudrición blanca” ataca cebolla
|
PRÁCTICA 10
CLASE
ASCOMICETOS
Los Ascomicetos al igual que los Basidiomicetes son hongos
superiores porque poseen estructuras más complejas de reproducción sexual.
Estructura vegetativa: Micelio septado.
Estructura
propagativa: Conidias que a veces se presenta en un
hospedante distinto al de las estructuras sexuales, por lo que un principio se
pensó que eran especies distintas. Esto originó que a las estructuras asexuales
se les diera otro nombre.
Por conveniencia y para evitar confusión, en la literatura
se les sigue llamando a los Ascomycetes con dos nombres correspondientes a la fase asexual y sexual. Las fases
asexuales sin embargo están consideradas en la Forma-Clase Deuteromycetes.
Estructuras
reproductivas; el ascogonio o gametangio femenino y el
anteridio o gametangio masculino. La unión
de los núcleos de los 2 gametangios da origen a las
ascas que contiene generalmente 8 ascosporas. Las ascosporas constituyen las
estructuras propagativas de origen sexual.
La mayoría de los Ascomycetes tienen sus ascas encerradas
en una estructura que toma el nombre genérico de ascocarpo pero de acuerdo a su
forma y otras características puede ser un cleistotecio, peritecio o apotecio.
Otro grupo de Ascomycetes tienen sus ascas dentro de los
lóculos formados en un estroma que está constituido por un conglomerado de
hifas.
1.
Sub-Clase
Hemiascomycetes: Presentan un ascocarpo con ascas libres generalmente
emergen a través de la epidermis del hospedante.
Especie: Taphrina (Exoascus) deformans
Enfermedad: “Cloca” del
melocotonero
Síntomas: Encrespamiento de las hojas las que además toman un tinte clorótico o
rosado brillante. La enfermedad se manifiesta especialmente en las hojas más
tiernas del ápice de las ramas.
2.
Sub-
Clase Euascomycetes: Las ascas están contenidas en un ascocarpo.
SERIE I:
Plectomycetes. - El ascocarpo es un cleistotecio que puede ser
completamente cerrado o puede tener un ostiolo.
Las ascas dentro del cleistotecio están distribuidos
desordenamente y a la madurez se desintegran.
Géneros:
Aspergillus y Penicillium (anamorfos); Eurotium
repens (teleómorfo)
Enfermedades: “Pudriciones”
y “mohos” en tonos diversos (síntomas).
SERIE II: Peronomycetes. El ascocarpo es un peritecio. El peritecio puede ser completamente
cerrado o estar provisto de ostiolo, pero las ascas están distribuidas de forma
ordenada.
Orden Erysiphales: Fitoparásitos obligados que causan la enfermedad conocida como “oídium” o “mildiu polvoriento”.
Estructura vegetativa: micelio septado y hialino que crece en
superficie del hospedante penetrando solo sus haustorios a las células
epidérmicas. Excepciones de esta regla son Leveillula
taurica y Phyllactinia corylea que
introduce su micelio más profundamente.
Estructuras propagativas de origen asexual: oidias que se
forman solitarias o en cadena en el extremo de los oidióforos.
Estructuras reproductivas de origen sexual: Ascosporas que
se forman en ascas de forma globosa. El cleistotecio que encierra las ascas
puede estar provisto de apéndices de forma y longitud variados. El cleistotecio
es la estructura de conservación de estos patógenos.
Figura 1: Peritecios oscuros de Ophiobolus
graminis Sacc. (Gaeumannomyces graminis Arx & D. L. Oliver) en las vainas
foliares de arroz. (Olivos, M. I. 1979).
Tabla 9.
Especies de hongos Eurotiales y sus hospedantes
|
Especies
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Hospedantes
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Salmonia
malachrae, Leveillula táurica (Oidiopsis
gossypii)
|
Algodonero
|
|
Erysiphe polygoni (Oidium balsamii)
|
Frijol, soya, arveja, tacón, lechuga.
|
|
Erysiphe cichoracearum (Oidium
ambrosiae)
|
Melón, sandía, zapallo, calabaza,
girasol, papa.
|
|
Sphaerotheca pannosa (Oidium
leucoconium)
|
Melocotonero, rosal
|
|
Podosphaera leucotricha (Oidium spp.)
|
Manzano
|
|
P. oxycanthae (Oidium erataegi)
|
Cirolero
|
|
Oidium caricae
|
Papayo
|
|
Erysiphe graminis tritici (Oidium moniliodes)
|
Trigo
|
|
Erysiphe graminis hordei
(Oidium
moniloides)
|
Cebada
|
|
Erysiphe graminis avenae
(Oidium
moniloides)
|
Avena
|
|
Uncinula necator
|
Vid
|
|
Oidium spp.
|
Mango, palto, yuca,
casuarina
|
El síntoma de la enfermedad es una pulverulencia blanca
grisácea en la superficie aérea de la planta. Ataques
severos provocan defoliación, necrosis de tallos,
caída de flores, deformación
y caída de frutos.
Orden Sphaeriales: Presentan peritecios coriáceos o carbonosos, esféricos, globosos o
piriformes con ostiolo y parafisas evanescentes; inmersos en los tejidos.
Especies: Phyllachora graminis parasita gramíneas
causando manchas cloróticas en las hojas, Ophiobolus
oryzinus (Gaeumannomyces graminis Arx
& D. L. Oliver).
Orden Diaphorthales:
las ascas tienen pedúnculos cortos evanescentes.
Genero Glomerella:
es la fase sexual de los géneros Gloesporium
y Colletotrichum
Especie: Glomerella
cingulata
Enfermedad: “Pudrición
amarga” de la manzana
Síntomas: “Escaldaduras” de color castaño oscuro en los
frutos: El signo se observa como pequeñas protuberancias negruzcas que son
peritecios o acérvulos que desarrollan gran cantidad de esporas de color salmón
rosado. Posteriormente el hongo produce pudrición del fruto.
Orden Clavicipitales: Produce peritecios dentro de un estroma bien desarrollado, las ascas
son largas y cilíndricas con un poro por el que salen ascosporas filiformes. Estroma: estructura vegetativa compacta
sobre o dentro de la cual se forman otras fructificaciones.
Especie: Claviceps
purpurea
Enfermedad: “Cornezuelo del centeno”, la característica de esta enfermedad es el
signo que se observa como un esclerocio
negruzco situado en las espigas de los cereales: Estos esclerocios caen al
suelo, germinan y producen los estromas que contienen los peritecios.
Producen ascocarpos abiertos llamados apotecios que tienen
forma de copa o disco de variados colores. Los apotecios llevan ascas
claviformes o cilíndricos en la superficie. Entre las ascas se intercalan
parafisas. Las especies causan pudriciones marrones en maderas, tanto en Europa
cómo América en frutales de pomo y hueso, fresas y arándanos.
Ordenes Importantes:
Orden Helothiales: Apotecios en forma de copa o disco, ascas levemente engrosadas en el
ápice, ascoporas redondas o elípticas.
Especies:
1.
Monilia fructicola (Wint). Honey y Monilinia laxa (Aderh. & Rubl) Honey.
Enfermedad:
“Pudrición morena del melocotonero”, “Pudrición marrón” Síntomas: Pudrición seca y momificación de los frutos.
2.
Sclerotinia sclerotiorum
Enfermedad: “Pudrición blanda de las hortalizas” o “moho blanco”
Síntomas: Chupadera pudrición de la parte del cilindro central del tallo. El signo se observa como micelio blanquecino
que se extiende en la raíz, cuello y hojas inferiores. A partir del micelio se
forman esclerotes y de estas estructuras de conservación se forman apotecios.
3.
Pseudopeziza medicagines
Enfermedad: “Mancha negra de la alfalfa”
Síntomas: Manchas circulares negruzcas en las hojas. El apotecio es en forma de
disco castaño oscuro muy pequeño que se presenta en el centro de la mancha.
Las ascas se forman
dentro de los lóculos de un estroma.
Orden Dothidiales: ascas bitunicadas, dispuestas en fascículos, no presenta parafisas.
Especie: Mycosphaerella musicola
Enfermedad: “Sigatoka” del
plátano
Síntomas: manchas cloróticas o necróticas, ovales o circulares, grises,
rodeadas por un anillo bruno oscuro.
Orden Pleosporales: ascas se forman entre seudoparafisas que son filamentos que se
originan en la pared superior del lóculo y crecen hacia abajo.
Especies:
1.
Venturia inaequalis
Enfermedad: “Sarna del manzano”
Síntomas: Manchas negruzcas en las hojas: En los frutos se producen lesiones
corchosas: Los frutos pueden resquebrajarse y deformarse.
2.
Physalospora perseae
Enfermedad: “Antracnosis del
palto”
Síntomas: Cancros en las ramas, troncos. En los frutos se presentan cancros
hundidos, rojizos pardos. El centro de estas marchas es de color rosado.
Orden Helotiales: Inoperculados, ascos engrosados en los ápices y ascosporas redondas o
en elipse.
Especies: Monilia fructigena (M. fructicola), Monilinia
roreri, Moniliophthora roreri.
Enfermedad: “Pudrición” de frutos
de corozo ¿? y pepita
Presentación de informe de prácticas por el
estudiante de Agronomía/Biología
- Estructuras morfológicas del hongo Botryotinia
fuckeliana
-
Ciclo biológico de Erysiphe necator
-
Describa Ud. en la orden fungosas a continuación, una familia, mencione 5 especies
y el control de los Capnodiales
-
Qué tipo de enfermedades controla el fungicida NATIVO.
Redactar
sus informes y todo documento académico usando el estilo APA
Participación
de los estudiantes y cumplimiento de presentar los informes de práctica.
Los
Basidiomicetes presentan una estructura especializada denominada Basidia (uni o multiseptada) con
esterigmas que sostienen 4 basidiosporas (AB, Ab, aB, ab) dentro de un basidiocarpo de diferente forma
(resupinado, cerebriforme, conchiforme, pedicelado). Hifas con células
binucleadas (dicarióticas), septas tipo doliporo (excepto royas y carbones); el micelio primario o promicelio, proviene
de germinar una basidiospora, generalmente es muy fino uni o multinucleado, sin
flagelo; siempre requiere unirse de otro promicelio para formar un micelio secundario.
La condición dicariótica proviene de la fusión de 2 células
uninucleadas, las cuales unen sus protoplastos más no sus núcleos; la célula
binucleada producto de la fusión se ramifica y cada una de las células resultantes
conservan 2 núcleos. Otra forma de dicariotizarse el micelio es cuando dos
basidiosporas germinan, forman un promicelio y al extremo del cual migran los
núcleos, estos 2 promicelios se atraen, se anastomosan y la célula resultante tiene la condición dicariótica, pared celular con quitina, provisto
de interconexiones celulares
externas: asas, clampas y
fíbulas; constituyen el grupo más evolucionado de los Fungi.
Se incluyen hongos comestibles y alucinógenos que
sintetizan toxinas, enzimas, alcaloides y ácidos orgánicos. Algunos
basidiocarpos macroscópicos comúnmente conocidos como “orejas de palo” (Chandrostereum purpureum) y píleos
semejantes a un pequeño paraguas Agaricus
sp, (Armillaria mellea).
Forman varios tipos de esporas durante su ciclo de vida por
lo que los hongos causantes de “royas” producen: uredosporas, teleutosporas,
picnidiosporas, aeciosporas y basidiosporas.
R. asexual: yemas,
fragmentación del micelio, conidias (oidios, oidióforos en el agaricáceo Coprinus lagopus) en su forma imperfecta
le corresponde a un ascomiceto; y por artrosporas.
Figura 2: Basidiosporas
de un Agaricus bisporus (champiñón) Tomado de la Web.
Otros
hongos causantes de “carbones” y “tizones” producen teleutosporas (clamidosporas)
y basidiosporas o esporidias, se producen sobre un promicelio (probasidio) que
resulta de la germinación de teleutosporas. Causan enfermedades de difícil
control, aunque no son serios problemas en hortalizas (chalote, puerro y ajo), diseminándose
por el viento, semillas, los seres humanos y animales.
Basidias septadas,
multicelulares, parásitos de plantas y musgos.
Tremellales. - hongos de consistencia
cartilaginosa, gelatinosa, saprobios o parásitos de plantas y de querezas.
Basidias con septas transversales y divisiones verticales formando dos
epibasidias. Ejemplo: Tremellodendron sp.
Auriculariaceae: Auricularia auricularia, Helicogloea,
Helicobasidium
Ceratobasidiaceae: Ceratobasidium sp. son hongos
gelatinosos.
Dacrymycetaceae: Dacrymyces deliquesces. Hongos
gelatinosos de color amarillo- naranja por el beta caroteno.
Tremellaceae:
incluye hongos gelatinosos o pedicelados: Tremella
fusiformis, Tremellodendrum sp. (Producto gastronómico chino).
Septabasidiaceae:
basidiocarpo difuso, casi polvoriento, Septobasidium
fumigatum, Uridinella sp. son parásitos de insectos (querezas).
Uredinales. - Son parásitos obligados
en helechos, coníferas y angiospermas; desarrollan el micelio intercelularmente y están
provistos de haustorios que extraen
nutrientes y en madurez emergen del tejido de la planta rompiendo la epidermis,
formando pústulas o soras
superficiales que contienen gran cantidad de esporas, diferentes, de acuerdo al
tipo de fructificación, ya que,
durante el ciclo de vida, pasan por diferentes fases. Causan enfermedades
conocidas como las “Royas” en la parte aérea de la planta.
En el Perú se menciona desde 1687 en la que afectó los cultivos de trigo de la costa peruana
hasta desaparecerlo por completo.
Las informaciones de esa época, nos dice de la aparición de
un “polvillo” sobre los trigales, y cuyo efecto se reflejaba en una disminución
de los rendimientos. En la sierra peruana se encuentra también las tres royas, pero predominan y hacen serios
daños, la roya negra, hasta los 2 500 msnm, la roya amarilla o
de las glumas sobre los 3 000 msnm.
El síntoma es una pústula, el hongo se desarrolla en los
espacios intercelulares y forma los haustorios, una vez maduro
rompe la pared y
produce gran número
de síntomas consistentes en pústulas (Basidiocarpo
resupinado) en hojas, vainas, tallos y glumas. En valles de Chao y Virú, se
presentan epifitias de royas en espárrago.
Los Uredinales son hongos parásitos absolutos, durante su ciclo de vida pasan por
cinco fases:
1.
0 = Pycnia o espermogonia (n):
picniosporas (Berberis vulgaris).
2.
I = Aecia o ecidios (n+n): aeciosporas;
amarillas, hospedante intermediario: B.
vulgaris
3.
II = Uredo (n+n): uredosporas, Triticum;
anaranjado o herrumbre. Reinfecta trigo por estomas.
4.
III
= Telia (2n): teliosporas, Triticum; pústulas oscuras; al final de la estación, sobreinvernan
5.
IV = Basidia o Promicelio (n): basidiosporas,
sobreinvernan; al germinar originan las Pycnias.
De
acuerdo a esas fases durante el ciclo de vida las royas pueden ser clasificadas
en:
i.
R. demiciclicas.- generalmente
tienen la fase O, I, III y IV, falta la fase
II.
ii.
R. microcíclicas.- royas que
presentan las fases 0, III y IV.
iii.
R.
macrocíclicas.- royas en la que por lo menos se presentan dos
estados dicarióticos y son de ciclo largo.
iv.
R. autoica se pueden presentar
todas las fases en una sola especie vegetal, por ejemplo
Puccinia asparagi, Uromyces phaseoli, Melampsora
lini.
v.
R.
heteroica es cuando unas fases se forman en la misma especie de
planta y otras fases en otros hospedantes. La roya requiere de un hospedante
alternante que depende del tipo de roya por ejemplo Puccinia graminis tritici, su principal hospedante es trigo y el
hospedante alternante es el agracejo: B.
vulgaris (picnia y aecia). Uromyces
caryophyllinus (roya del clavel)
fases II y III; 0 – I, en las
especies de Euphorbia sp.
La fase Telia/teliospora
al germinar produce basidiosporas de diferente signo y penetran al tejido de Berberis sp., se desarrollan y forman las estructuras que se
conocen como picnias o espermagonias conteniendo las
espermatias o gametos masculinos, y en la parte externa en forma de flequillo
se encuentran las hifas fértiles
o gametos femeninos, al ser compatibles se forman las hifas
dicarióticas y en el envés de la hoja se forma la pústula, que viene hacer una
aecia con aeciosporas, las que por acción del viento caen sobre las vainas
foliares del trigo, germinan
y penetran, se desarrollan y luego en base a este tejido se forma
otro tipo de pústula de color
marrón, es un Uredo con las uredosporas unicelulares.
La fase Uredo/uredosporas es muy importante por ser repetitiva, se produce muchas
veces mientras el cultivo está en estado vegetativo. Hasta 20 o más
generaciones de uredosporas. Causas grandes epifitias. La uredospora puede germinar en la misma
hoja y formar otro tipo
de pústula que es una telia con teliosporas bicelulares; esto sucede en
plántula o cuando la planta madura
prematuramente causa una infección; una pústula en esta fase al germinar forma una basidia (4 basidiosporas).
El trigo es una planta introducida al Perú, en la época del
coloniaje, los agricultores a veces no desean cultivar
esta planta, no solo por temor a esta enfermedad, sino porque no responde
a sus expectativas económicas.
Actualmente, su cultivo
solo se realiza
en los valles interandinos, siendo
necesario, importar anualmente
la mayor parte del trigo que se consume en el
país.
1.
Coleosporaceae: Coleosporium solidaginis
2. Melampsoraceae: Melampsora lini “roya” del lino, Cronartium ribicola, Ceratelium fici.
3.
Puccinaceae:
Ejemplos: Uromyces phaseoli, “roya”
del frijol, (Caeoma, Aecidium, Roestelia, tienen la fase aecia).
Hemileia vastatrix produce la “roya”
del cafeto
Phakopsora vitis Syd. Causa la “roya”
sobre las vides, pústulas erumpentes en el envés y amarillamiento el haz.
Phakopsora gossypii (Arth.)
produce la “roya” en algodonero, se ha encontrado en la India, Venezuela y
Colombia.
Puccinia melanocephala (uredosporas) “roya” de la caña de azúcar; manchas
amarillas y luego marrón rojizo, manchas húmedas alargadas, paralelas a las
nervaduras, y visibles tanto en el haz como en el envés del parénquima foliar.
Las manchas están rodeadas de un halo amarillo y luego
se abren para originar las
pústulas que exponen las uredosporas. Estas estructuras son las que se
diseminan. La enfermedad se ve favorecida por condiciones de temperaturas y
humedad relativa alta, que hacen que germinen las uredosporas y penetran a las
hojas; se llega producir veces pérdidas considerables.
La
enfermedad se controla con uso de variedades resistentes, pero en caso que se
presente las condiciones favorables para el hongo y los daños sean de
consideración se aplican los mismos productos para la roya del algodonero.
P. coronata var.
avenae “roya” de la hoja en avena. Ramnus cathartica (hospedante
alternante).
Aecidium cantensis “roya” de la papa, posee la
fase aecia
Puccinia asparagi D.C., “roya” del espárrago autoica y macrocíclica,
en el valle de Chao, Virú.
Puccinia graminis Pers. “roya del trigo”
(Pústulas lineales a lo largo del tallo, hojas, vainas aristas y granos).
Puccinia
graminis f. sp. tritici roya morena o
de la hoja del trigo. Hospedante alternante es
el Thalictrum
sp.
Puccinia graminis f. sp. hordei, roya negra o roya
del tallo de la cebada
Puccinia graminis f. sp. secalis,
roya
negra o roya del tallo del centeno
Cada forma especial (f.
sp.) está subdividida a su vez en otros grupos que se denominan razas fisiológicas, cada una de las cuales
ataca a determinadas variedades de cada cereal. La identificación de estas
razas, se hace por medio de variedades diferenciales por cada cereal.
La clasificación de las cuales, depende la reacción que
ofrezcan al tipo de roya probada, de acuerdo a una clave internacional
establecida. Hasta 1965 se habían determinado 200 razas fisiológicas de Puccinia graminis tritici.
Todas las fases de P.
graminis pasan una parte de su ciclo biológico en B. vulgaris y otros Berberis.
En Huancavelica a 3254 msnm se ha encontrado B. divaricada Rusly, infectado por roya (aecidias), y lo mismo se
ha observado en Cajamarca, Perú.
Puccinia hordei
(P. anomala) produce la “roya de la cebada” H. intermediario Ornitoghalum
umbelatum.
Puccinia striiformis f. sp hordei, “roya amarilla” o
“de las glumas” de la cebada
Puccinia striiformis
f.
sp. tritici, “roya amarilla” o “de las glumas” del trigo. Thalictrum spp.
Puccinia
paulensis “roya del ají”
Puccinia pimpinellae
“roya”
del anís”
Puccinia
chrysanthemi “roya” del crisantemo
Puccinia helianthus “roya del girasol”
Puccinia purpurea se encuentra en la
grama china, sorgo y sudan grass
Puccinia polysora “roya” del maíz
Puccinia
orachidis “roya” del maní
Puccinia sorghi “roya” del Zea maydis y Oxalis spp.
Puccinia porri “roya” del ajo, es una
roya autoica. No está en Perú (Ames 1995)
Puccinia
cressae “roya” en Cressa truxillensis (royas
de plantas halófilas)
Phragmidium disciflorum “roya”
de la rosa es autoica; produce las
formas (0; I; II; III y IV)
Tranzchellia pruni-spinosae, produce la “roya”
del ciruelero
Uredo
cherimoliae “roya de la chirimoya”
Uromyces caryophyllinus produce
la “roya” del clavel Uromyces phaseoli var.
typica “roya” del frijol Uromyces cicerons arietinus “roya” del
garbanzo Uromyces fabae “roya” en
haba y lenteja
Uromyces pisi “roya” de la arveja
Uromyces medicagines roya de la alfalfa
Cephaleurus virescens Kunze, roya roja del té: pero en este caso es causada por un alga, en la
cara superior de las hojas son discos blancos y rojizos, delgados superficiales
y fuertemente adheridos (Bazán de Segura, 1965).
Asignación: Confecionar la Escala para evaluar “Royas” en una Poacea y otra Fabaceae.
Figura 3: Ciclo de la
roya de los cereales. Cortesía R. Mont.
Control de royas. - Usar fungicidas de contacto como los Ditiocarbamatos, cúpricos, o sistémicos de acción tóxica (Triazoles:
Alto 100 SL y Granit SC), sulfonamidas y Baytan a las raíces, empleo de
variedades moderadamente resistentes en cebada (UNA-80, UNA- 8272, Buenavista, otras) en trigo y en otros cultivos brindan los mejores resultados en campo.
Hacer
labores culturales: enterrar las áreas afectadas, ventilación del campo y otras
más. Remoción de los hospedantes alternantes de patógenos, rotación de cultivos
para disminuir el incremento de las poblaciones de patógenos, seleccionar épocas
de siembra y evitar períodos favorables de fuertes daños, uso de semillas
libres de roya y cultivos trampa,
selección de sitios de cultivo,
poda, defoliación, aislamiento de otros cultivos,
manejo del área y
fertilizantes.
En
Conecticuct y Massachussets se dieron leyes para erradicar el Berberis (Parris 1968), como hospedante alternante de la roya del tallo del trigo
(Puccinia graminis) antes de que esta
interrelación fuera probada en 1865. Se enfatiza en Manejo integrado de plagas
(insectos y patógenos).
Orden Ustilaginales.
- Son hongos que causan los “Carbones” o “Tizones”. El
síntoma es una masa pulverulenta de color amarilla, anaranjado, verde o negro
que se forma en la parte aérea de la planta (tallos, inflorescencias, granos)
como si fueran “bolsas carbonosas”. Al atacar las Poaceas, el almidón del grano
es reemplazado por la masa pulverulenta negruzca muy notoria constituida por
las clamidosporas del hongo, éstas al germinar producen basidiosporas.
Poseen
una limitada época de infección y un lugar limitado en el hospedante para
producirla.
1. Ustilaginaceae:
Ustilago, Sphaceloma, Tecaphora.
2.
Tilletaceae: Tilletia barclayana (granos de arroz
reemplazados por masa carbonosa pulverulenta negra), Urocystes, Neovossia, Entiloma
3.
Graphiolaceae: Graphiola
phoenix.
Figura
4:
Ciclo biológico
de Tilletia caries, B, C, E, G, I, tomado con permiso de los autores, de Bunt
or stinking smut of wheat (planografiado), 1941, Holton y Heald, Burguess
Publishing Co., Minneapolis, con peermiso, del Manual of Plan
diseases, de F. D. Helad, 1926, McGRaw-Hill Book Co., Nueva York.
Se consideran los siguientes tipos de Carbones:
Ustilago nuda “carbón desnudo” de la cebada y del trigo; se cultiva en el laboratorio
y crece como levadura y no como hifas.
Ustilago
tritici “carbón desnudo del trigo”
Tilletia caries, “carie” o “carbón”
del trigo
Ustilago hordei, “carbón vestido de
la cebada”
Ustilago
kolleri, “carbón cubierto de la avena”
Urocystes cepulae “carbón de la
cebolla”
Neovosia
horrida “carbón del grano del arroz”
Ustilago maydis “carbón del maíz”
Tecaphora solani “carbón de la papa”
Figura 5: Carbón del maíz amarillo en campo - Tucume-2002.
Lambayeque. Fototeca
M. Olivos.
Ustilaginoidea virens.- La literatura
fitopatológica citan a (Atkins 1974,
Cheaney y Jennings 1975, Ou 1972, Revilla 1951, Revilla 1955) que mencionan al
hongo causante del “Falso carbón del
arroz”, según García (1979) del Centro de Investigaciones de arroz en Vista
Florida, Ferreñafe al hongo U. virens que pertenece a
Ascomycetes (Orden Sphaeriales) y no a la Clase Basidiomycetes (Ustilaginales)
al cual pertenecen los “carbones” propiamente dichos, por lo cual estoy en
desacuerdo dado que no se encuentran ascostromas. Cada una de las panojas
muestran de 1 a 7 masas (spore balls) coloreadas, que remplazan completamente
al grano y con un máximo de 11 mm, con masas de color anaranjado intenso y
color verde oscuro. Hoy se registran en variedades modernas desde la campaña
2005-2006.
Ustilago scitaminea “Carbón en caña de azúcar”, presente en
Paramonga (Perú), Colombia, Ecuador y en los campos azucareros de ex
cooperativas agrarias en Lambayeque.
Entyloma oryzae H. &
P. Sydom “Carbón
de la hoja de arroz”,
los síntomas son manchas
lineales, rectangulares o elípticos angulares en las hojas, son de color negro
plomizo, cubiertas por la epidermis. Al remojar en agua durante unos cuantos
minutos, la epidermis se rompe poniendo de manifiesto abajo una masa de esporas
negras. La cantidad y la fecha de aplicación del nitrógeno tienden a influir en
la severidad de la enfermedad.
Figura 6:
Ciclo de vida del Ustilago maydis. Tomado de Fincham &c Day.
Control de los tipos de Carbones:-
1. - Carbones de
Infección floral
Tratamiento
de la semilla con agua caliente, que consiste en remojar la semilla por 10
minutos en agua a 54º C, enfriar inmediatamente en agua fría y esparcir la
semilla para que se seque antes de sembrar. Aunque el agua caliente no resulta
práctica para grandes lotes de semilla, se justifica si es para lotes aislados.
Se puede remojar la semilla por 4 - 5 días a 21-24 º C y tratamiento de semillas con Vitavax a dosis de 150 a 200 g
/ 100 k.
El
empleo de Vitavax-300, a dosis de 150-200 g / 100 k de semillas o menos y
promover la rotación de cultivos.
Realizar
prácticas culturales, como destrucción de plantas infectadas antes de que las
agallas revienten y evitar abonos con guano de corral procedentes de animales
alimentados con mazorcas o tallos carbonosos. En caso del “carbón del grano de
arroz” se recomienda el uso de variedades resistentes en la zona.
Polygonum hydropiperoides Michx.var.
psilostachyum, se encontró a este
hospedante infectado por pequeñas agallas de carbón en el Abra de Porculla,
Lambayeque, 2004 Posibles agentes causales son:
Ciadorrhinium foecundissimum Sace et. Marchal
Melanopsichium austro-americanum Melanopsichium pennsylvanicum Hirschh
Ustilago anomala (floral smut ó
carbón floral)
Ustilago bistortarum (inflorescence and leaf
smut), U. shastensis
U.
tenuispora, Ustilago basniaca, U. piperi.
U.
utriculosa (inflorescencia carbonosa, carbón desnudo, seed smut) Busgoa nigra (Hots)
G. C.
U.
hydropiperis (semillas de carbón
cubierta).
Basidiocarpo
no tabicado ni profundamente dividido; incluye setas, hongos en ménsula, hongos
corales, bejines, estrellas de tierra, hongos nido de pájaro. Las basidiosporas
germinan por medio de un tubo germinal.
Palabras clave: Cistidios (semejante a
basidia pero estériles), basidiolas (semejante
a basidias pero estériles), setas,
esferocistes (células esféricas o células globosas que se encuentran entremezcladas con el micelio
en el himenio), peridíolo, cámara glebal de pared
dura, cereacea con basidiosporas. Medas,
son terminales de hifa que rompen el estrato himenal. Acantofisas, son terminales de hifas que se caracterizan por la
presencia de proyecciones laterales cortas.
Dendrofisas, igual a las anteriores
pero ramificadas. Equinodios, son una
especie de espinitas que se presentan en la superficie de cualquiera de las estructuras
citadas. Glebas:
La
clave simplificada en esta subclase según Alexoupoulos (1968) y Roncal (1993) es
como sigue:
Exobasidiales:
basidiocarpo ausente, himenio cubre la superficie del tejido vegetal
parasitado. Exobasidium vaccinii,
parasitan a Theaceae y Lauraceae.
Basidiocarpo presente y es abierto, bien desarrollado,
basidias sin septas y con cuatro basidiosporas.
1. AGARICALES. - “Hongos
de sombrero”, son comestibles. Son de interés por que se asocian con plantas
superiores para formar micorrizas. Otras son venenosas con toxoalbuminas y
alcaloides o parásitos.
Agaricaceae: Amanita muscaria, A. verma (angel destructor), Pholiota
precox, Pleurotus ostraetus (Jacq.
Ex Fr.) Kummer, Agaricus campestris var.
bisporus, Panus sp., Volvariella,
Lepiota rachodes, Shizophyllum sp.
Tricholoma sp. Crinipellis perniciosa (Stahel)
Singer: “la escoba de bruja” del Thebroma
cacao (cacao).
Boletaceae: Boletus edulis (boletina) o Cricunopus Kartps. Exobasidiaceae: Exobasidium
vaccinii Woron Paxillaceae: Paxillus
atramentosus
Russullaceae: Rusulla emetica
Hygrophoraceae: Hygrophorus coccineus
2. POLYPORALES. - himenio
dispuesto en diversas formas, los basidios en poros y resistentes:
Telephoraceae: Corticium solani = Pillicularia
filamentosa y Thanatephorus cucumeris
= Rhizoctonia
solani Kühn. Pellicularia
koleroga (arañero del rosal), Stereum
hirsutum.
Clavariaceae: Clavicorona pixidata, Ramaria stricta
Cantarellaceae: Cantharellus cibarius
Hydnaceae: Hericium erinaceus, Echinodactium tinctorium
Polyporaceae: Polyporus squamosus, Fomes
applanatus, Ganoderma lucidum, G. applanatum.
Figura 7: Agaricus bisporus (champiñones). Empresa Pacus. Lima, Perú. Fototeca María I.
Olivos (2005).
El
basidiocarpo es cerrado no desarrollado, recubierto de una a dos capas de
peridio, redondo, siendo la capa externa generalmente gruesa y coriácea.
Presentan diversas formas de glebas (parte fértil del basidiocarpo, es
interna): coraloide, lagunar, unipileada, multipileada. Las basidiosporas son
diseminadas por dehiscencia del basidiocarpo o por una abertura o estoma que se
forma a la madurez.
1.
HYMENOGASTRALES.- Gleba cartilaginosa, no se descubre a la madurez
Hymenogastraceae: Geastrella Hysterangiaceae: Leucogaster arcularius Melanogastraceae: Melanogaster
sp.
Hydnaginaceae: Arcangeliella
Scotiaceae: Elasmomyces
2.
LYCOPERDALES.- Un peridium
externo engrosado y el peridium interior es
delgado.
Lycoperdaceae.- Lycoperdon sp. y Clavatia sp.
Geastracea: Geastrum rufescens, peridium a la
madurez se rompe y se abre a manera de una estrella.
Tulostomatacea: Tulostoma campestre, T. simulans, la
gleba es lagunar
Sclerodermatacea: Scleroderma verrucosum, es un hongo
simbiótico con gleba compacta.
4.
PHALLALES.- En estado de
“huevo” el peridium es coriáceo.
Phallacea: Phallus impudicus, P. ravenelii
Clathraceae: Clathrus ruber
5.
NIDULARIALES.- presenta peridio,
externo, y peridiolas coráceos dentro de una
bolsa
Nidulariacea: Crucibulum vulgare, Cyathus stercoreus y Nidularia sp. El primero tiene las
peridiolas conectadas a la pared lateral del peridio y durante la descarga del
funículo queda en el peridio, en la segunda especie la cuerda funicular queda
adherida a la peridiola, y en Nidularia tiene
peridiolas embebidas en mucilago y no tiene la cuerda funicular.
Figura 8: Bejin (Coprinus sp. Basidiomicete). Fototeca. M. I. O.
J.L.O.
Chiclayo. 2006.
Figura 9: “Sombrerito” (Lepiota sp. Basidiomicete)
El ser viviente más extenso del planeta es el fungi Armillaria ostoyae que se extiende en
una superficie de 10 millones de m2 en un bosque de Oregón, Estados
Unidos y México. Ha estado creciendo durante
miles de años y
por tanto es uno de los organismos más longevos del planeta.
Las setas ostra son algunas de las más populares en la cocina contemporánea.
Entre más pequeñas sean son más flexibles y de sabor menos áspero.
A.
ostoyae (hongo miel), Pleurotus ostreatus, Pleurotus eryngii son hongos tipo setas saprófitos
comestibles son en forma de concha, gírgola, champiñón ostra, bolet d´orella,
oreja de palo, belarri landu.
Las setas ostra son cultivables, de allí que sean
accesibles en los mercados mundiales. Son una fuente de proteínas, grasas,
carbohidratos, vitamina B y antioxidantes. Cuando están frescas al 88% de humedad. La seta ostra es de los hongos
más valiosos y saludables
de Europa, ya que contiene muchas
sustancias biológicamente activas con propiedades antivirales, antibacterianas
y efectos antiinflamatorios. Las investigaciones demuestran que la proporción y
cantidad de las sustancias activas contenidas en la seta ostra son ideales para
el cuerpo humano, además, no se han registrado efectos adversos, ni sustancias
que sean peligrosas para la salud humana.
El micelio de las setas ostra se extiende debajo de la
corteza del árbol donde crecen. Tiene la particularidad de atacar a los
nematodos, para emplearlos como alimento. El micelio genera hifas que emiten
una sustancia química que ataca a los nematodos, se trata de una sustancia
pegajosa que paraliza a la presa. Posteriormente, las hifas se introducen por
la boca de los nematodos y emite unas proteínas que los digieren de adentro
hacia fuera. Es muy importante este recurso, pues aporta uno de los nutrientes
fundamentales para la vida que es el nitrógeno. Aunque este elemento es uno de
los compuestos más abundante del aire, ni los animales ni estas setas lo pueden
absorber directamente. Los hongos lo obtienen de los nematodos y los consumen
animales y plantas.
El interés de estudiar el micelio de las setas ostra es analizar cómo ataca a los nematodos;
generan proteínas que se unen en cadenas capaces de rodear y perforar las
células que devoran; posteriormente, otro tipo de proteínas ingresan en su
interior y las destruyen.
Este mecanismo podría
brindar herramientas para combatir células
cancerosas en humanos; por
supuesto, falta mucho por hacer antes de que sea un procedimiento efectivo y seguro, J. Fierro, y comunicación
personal de J. Laos. Biota (16 enero 2021).
Es necesario estudiar cómo los hongos ostión atacan a su
presa empleando una sustancia llamada Pleurotolysin, (para curiosos), son parte de la ciencia
básica que nos puede ayudar a combatir enfermedades humanas
como el cáncer ya que es una forma
de destruir células.
Las plantas también pueden ser afectadas por las algas como
Cephaleurus viriscens que produce puntos o círculos
pequeñitos en las hojas y ramas de los árboles,
estos puntos tienen una estructura afieltrada y un color
marrón rojizo o verde grisáceo,
de acuerdo a la época
del año en la Amazonia. Aunque muchas lesiones se juntan cubriendo grandes
y a veces hasta la extinción de las ramas.
Figura
10: Setas ostra: Basidiomycetes
Figura 11: Setas ostra: Basidiomycetes
Los síntomas o signos típicos nos permiten conocer que
patógenos está produciendo la enfermedad, en muchos casos se requiere hacer
observaciones microscópicas, observaciones que por otro lado tuvieron
que hacerse para relacionar los síntomas y signos con el agente causal. Cuando el patógeno produce
abundante micelio o fructificaciones sobre el hospedante, es suficiente hacer
un simple raspado sea material fresco o herborizado y efectuar la preparación
para la observación microscópica.
Si el patógeno produce micelio o fructificaciones, pero
estas se encuentran en el interior del
hospedante entonces es necesario efectuar cortes ya sea a mano o con micrótomo
o extraer las fructificaciones con una aguja de disección, para hacer la preparación.
Si el patógeno no tienen el suficiente desarrollo para
permitir hacer una preparación microscópica se puede recurrir al empleo de
cámara húmeda o la siembra en medio de cultivo. Estos métodos solo pueden
emplearse cuando se trata de organismos saprobios o parásitos facultativos.
Para facilitar la preparación y observación de un organismo
que se halla en una muestra demasiada seca, debe adicionarse sobre dicho
material una gota de hidróxido de potasio al 2-10%. En algunos casos para
facilitar la observación de estructuras se emplean los colorantes. Ej. el azul
de metileno sobre todo si se tiene micelio, esporas, septos y apéndices
hialinos.
En un material se desea observar las relaciones
histológicas del patógeno con el hospedante es necesario efectuar cortes al
micrótomo, para lo cual se emplea técnicas especiales de fijación.
Si se trata de bacterias es práctica usual y necesaria
emplear los colorantes como violeta de genciana, eritrosina, safranina y otros.
O utilizar un sistema de tinción. Por ejemplo, el colorante de Gram, que
permite determinar si las bacterias son Gram positivas o Gram negativas.
Cualquiera de los casos citados,
las preparaciones microscópicas pueden hacerse temporal
o permanente.
Temporal: usado mayormente en su
conservación, empleándose generalmente agua. Permanente: Cuando se desea conservar por tiempo prolongado,
utilizando sustancias como Bálsamo de Canadá, lactofenol, gelatina-glicerina, azul
de metileno y otros.
Cámara húmeda: La cámara húmeda consiste
en un recipiente transparente de polietileno debidamente desinfestado en el
cual hay agua en cantidad suficiente para garantizar un ambiente húmedo y
dentro del cual se coloca una pequeña muestra de una planta enferma
desinfectada, sin que toque la superficie del
agua. Es el remplazo de una estufa o incubadora.
Modo de hacer la Cámara húmeda. - Tomar un
trozo de material enfermo, desinfectarlo pasándolo lentamente por la llama del
mechero o cortarlo asépticamente en trozos: desinfestar la cámara húmeda con
alcohol, dejar que se evapore y luego verter un poco de agua estéril y por
último colocar un trozo de material enfermo sobre la lámina de vidrio. Observar
a los 4-7 días el crecimiento y desarrollo fungoso cuando es estación de
invierno.
Hacer una preparación para la observación microscópica e identificar al
patógeno.
Cultivo en medio
artificial. - En un procesamiento largo que consiste en pasar a sembrar una pequeña
porción de muestra enferma en un medio de cultivo artificial ya sea sólido o líquido y que ha sido
previamente vertido en una placa Petri o en tubo de ensayo y luego hacer diversos preparados microscópicos para
observar la morfometría de los hongos.
Disolver el medio de cultivo (si este es sólido), por
ejemplo: (agar nutritivo, papa-dextrosa agar, agar Sabouraud) en baño maría,
deje enfriar hasta
que la temperatura sea tolerable
a la palma de la mano,
verter el medio de cultivo
en placas de Petri, aproximadamente 20 ml por placa, previamente esterilizada y bajo
condiciones de asepsia (Cámara de inoculación) deje solidificar.
Lavar el material
enfermo a sembrar, en agua corriente, eliminando todas las impurezas. Cortarlo
en trocitos de 0,5 cm en el límite de la zona enferma y sana. Desinfestar el material
con alcohol a 76° o hipoclorito de sodio al 1%:
Luego
proceda al cultivo del material enfermo estéril sobre el agar semisólido en la
placa de Petri. Escriba el nombre del material sembrado con plumón de tinta
indeleble el contenido y la fecha en la tapa de la placa. Colocar las placas en
la estufa, teniendo en cuenta que deben colocarse con el medio de cultivo o
agar hacia arriba, cerrar y esperar unos días.
A los 7 días hacer una preparación microscópica y observar
al microscopio compuesto a menor aumento el crecimiento y desarrollo de hongos
en las placas de Petri y con la ayuda de la Guía de práctica y las claves de
identificación taxonómica de hongos se procederá a identificar los hongos.
Referencia:
Castaño, J. (1986).
1.
El microorganismo siempre debe de
estar asociado con la enfermedad y a su vez la enfermedad no se debe presentar
sin que el organismo o agente causal se encuentre presente o haya estado presente.
2.
El microorganismo en cuestión debe
ser aislado en cultivo puro y deben estudiarse sus caracteres específicos.
3.
El microorganismo debe aislarse de
los tejidos enfermos, cultivarse o identificarse con aquel inoculado.
4.
Que de la planta artificialmente
inoculada se pueda reaislar el agente patógeno, el que debe corresponder
exactamente al inoculado.
Los cuatro postulados de Koch que son la base para la
determinación exacta de las enfermedades de las plantas, a veces no es posible
realizar todas ellas, pues algunos hongos no, se pueden cultivar en los medios
artificiales de cultivo.
Tratándose de virus, el problema es más complicado
pues como ya se aceptado por los fitopatólogos no se puede cultivar en estos
medios de cultivo. Quedaría por eso, tan solo el efectuar las inoculaciones artificiales
de plantas enfermas a plantas sanas. Siendo esto fácil de realizar con ciertas
clases de virus que atacan a vegetales como son los casos de los virus que
afectan la caña de azúcar, el tabaco, la papa, el sorgo, el maíz, el tomate
entre otros en los cuales se han desarrollado métodos especiales para cada uno
de ellos como en el caso de la “psorosis del naranjo” que es demasiado difícil
según lo reportó el extinto García Rada en 1946.
PRÁCTICA 15
Nematodos provienen de los vocablos
griegos nema (hilo) y eidés
u oidos (con aspecto
de), son definidos como animales filiformes con cuerpo sin segmentos y
más o menos transparentes, cubierto de una cutícula
hialina, la cual está marcada
por estrías o anillos; son redondeados, poseen boca y carecen de
apéndices; aunque las hembras adultas de algunos géneros son abultadas, como Meloidogyne Goeldi y Heterodera Schmidt (Siddiqi, 2000; Perry
& Moens, 2006). La mayoría son microscópicos, con una longitud entre 300 y 1.000
mm, y entre 15 y 35 mm de diámetro
(Agrios, 2005; Luc et al., 2005; Perry
& Moens, 2006).
Los nematodos son parásitos microscópicos, taxonómicamente
se les ubica dentro del reino animal en el Phylum de los Aschelminthes. Los
nematodos tienen gran importancia por causar pérdidas cuantiosas en diversos
cultivos. Los cultivos afectados se ubican en
parches o manchas. Para observar los nematodos se hacen necesarias
técnicas especializadas de extracción a partir de tejido vegetal o de suelo.
Al microscopio los nematodos son delgados traslucidos de
forma ahusada. Según la edad y especie la hembra varia morfológicamente del
macho, pero todos tienen una característica común que es la de presentar un estilete, con el cual causan heridas
en el hospedante, énfasis la
raíz. Las plantas afectadas por nematodos se hacen más sensibles a la falta de
humedad, fertilización pobre, otros. Y sucumben fácilmente ante enfermedades
fungosas, bacterianas y virales. Los síntomas se presentan en la parte aérea o
subterránea en el hospedante.
Aphelenchoides
parietinus. Afecta el algodón
Síntomas: necrosis, debilitamiento de las yemas y puntos de crecimiento en la
porción aérea de la planta.
Anguina tritici. Afecta trigo
Síntomas: Encrespamiento del follaje,
agallas en las semillas.
Aphelenchoides beseyii.
Orquídeas Síntoma: Caída de las
flores
Aphelenchoides ritzemabosi.
Crisantemo
Síntomas: Manchas cloróticas y necróticas en las hojas.
Phytophthora
más
nematodos
Síntoma: Manchas necróticas radiculares.
Dytylenchulus
dipsaci. Cebolla. Síntoma: Pudrición en el bulbo Meloidogyne incognita. Varios cultivos.
Síntoma: Agallas o nódulos en
las raíces u órganos subterráneos.
PROCEDIMIENTOS PARA EL
DIAGNÓSTICO DE ENFERMEDADES DE PLANTAS
Clave
para el diagnóstico de agentes causantes de enfermedades. La secuencia para
iniciar el diagnóstico consiste en seguir la clave de French y Hebert (1982):
1.
A1 Manchas y Chancros
2.
B1 Signos de patógenos visibles al microscopio estereoscópico.
3.
C1 Signos de hongos:
Realice preparaciones microscópicas de las estructuras con tinción
cuando sea apropiado…............................................................................................................. 12
Guzmán-Piedrahita Ó.A., Jairo Castaño-Zapata y Bernardo
Villegas-Estrada
4.
C2 Signos de bacterias (exudado o manchas húmedas):
5.
Realice preparaciones microscópicas
para observar flujo bacterial en campo oscuro, luego efectúe tinción de Gram…................................................................................................................... II
6. 6. B2 Ausencia de signos de patógenos.
7. 7. C1 Incube la muestra en cámara húmeda y luego regrese a A1
……………………………......................................................................................III
8. 8. C2 Mosaicos, moteados u otros síntomas virales posibles.
9. 9. C3 Decoloración y otros síntomas de desnutrición.
10. 10. A2 Marchitez
11. 11. B1 Sistema radical
afectado.
12. 12. C1 Presencia de nematodos o sus síntomas.
13. 13. C2 Pudrición radical, tratar como
A1 B2 Sistema vascular descolorado.
C1 Prueba
de flujo bacterial en agua, luego efectúe tinción de Gram……................
II C2 Ausencia
de flujo, hacer
corte para observar hongos……………………………………....................................I
14. 14. A3 Pudriciones
15. 15. B1 Tallo o raíz, tratar como A1
16. 16. B2 Órganos de reserva (tubérculos, raíces)
17.
C1 Realice preparaciones
microscópicas y observe para hongos, con tinción cuando sea indicado I
18.
C2 Haga preparaciones para observar
bacterias en campo oscuro (microscopio de contraste de fase), luego realice la
tinción de Gram….......................................................... II
19.
C3 Inocule tejidos sanos con los
afectados cuando la pudrición es avanzada; luego observe como C1 y C2........................................................................................................ IV
SECUENCIA
PARA REALIZAR UN DIAGNÓSTICO CORRECTO
Para realizar un diagnóstico correcto
se recomienda seguir la secuencia
propuesta por Streets (1972):
a) Identifique la planta hospedante, adicionando la variedad. b) Síntomas en el
campo. Utilice su propia información o use la proporcionada por quien envía la
muestra c) Condiciones de cultivo. Información del tipo de suelo, prácticas de
riego, fertilización y aplicación de plaguicidas d) Síntomas en detalle.
Observación de manchas, añublo foliar, pudrición de semillas o frutos, cancros
en las ramas o tallos, pudrición o agallas en las raíces,
otros. e) Observación en aumento bajo.
Observación con la lupa de alto aumento en el campo, un estereoscopio en
laboratorio de la superficie de las lesiones o tejidos muertos; esto permitirá observar la presencia de esporas,
cuerpos fructíferos de hongos o exudados bacterianos. f) Observación por el microscopio compuesto para detallar
las estructuras.
g) Aislamiento. Aislar el microorganismo sospechoso en
condiciones asépticas de laboratorio. h) Patogenicidad. i) Si el patógeno en
observación es identificado con manuales especializados, y los postulados son demostrados, el patógeno aislado
es el responsable de la enfermedad.
Si el patógeno observado es el causante de la enfermedad,
pero no existen informes previos, entonces se debe recurrir a los postulados de
Koch, establecidos en 1876:
1. Debe haber una
asociación constante entre el organismo y el hospedante enfermo.
2. Se
debe aislar el patógeno sospechoso del hospedante enfermo y obtenerlo en
cultivo puro.
3. Se debe inocular un hospedante sano con el cultivo puro del organismo
sospechoso y reproducir los
síntomas típicos de la enfermedad.
4. Se
debe reaislar el patógeno en cultivo puro a partir del hospedante inoculado y
enfermo y sus características deben ser exactamente iguales a las observadas en
el cultivo obtenido en el segundo postulado.
Después de diagnosticar correctamente el agente etiológico
de la enfermedad, el agricultor se preguntará ¿qué puedo hacer con la
enfermedad? y ¿cuál es el manejo? Especificar la mejor medida de manejo de cada
enfermedad es difícil. La respuesta correcta a estos interrogantes se obtiene
consultando referencias selectas, fundamentalmente a través de la experiencia
que tenga el Fitopatólogo, como lo expresó Streets “no hay sustituto para la
experiencia”.
Si no se encuentra algún organismo o agente asociado
a la enfermedad, se asume
que es causada por un factor ambiental, el cual puede interferir con las
funciones fisiológicas normales de las plantas.
Técnicas
inmuno-enzimáticas. - son
pruebas rápidas para identificar patógenos de
plantas. El ensayo
de inmuno-absorción ligado
a la enzima (ELISA, por sus siglas en inglés) es el más usado
por su especificidad, simplicidad y bajo costo.
Esta técnica que se realiza en
platos de poliestireno, utiliza los anticuerpos (inmunoglobulinas) producidos
por el sistema linfático de un vertebrado (conejos, ratones, otros) para
reconocer un antígeno específico (proteínas, epítopes o determinantes
antigénicos), es decir, el agente, sustancia o microorganismo extraño inyectado
en el torrente sanguíneo del mismo; por lo tanto, la reacción será específica
de cada anticuerpo para su respectivo antígeno (Dewey, 2002). Hoy existe la
técnica CRISP.
Técnicas
bioquímicas y moleculares. - La identificación de bacterias
se han basado en las pruebas fisiológicas y bioquímicas, mientras que las
identificaciones de hongos se continúan realizado con base en características
morfológicas, tales como tipo de espora, forma y color de las esporas. Sin
embargo, en los últimos 40 años, los avances en bioquímica microbiana y
biología molecular han permitido la expansión de los métodos de diagnóstico y
procedimientos de identificación de diferentes patógenos de plantas. La
detección de actividades fisiológicas y bioquímicas se realiza fundamentalmente
sobre medios sólidos o líquidos, y se basa en la apariencia del crecimiento o
un cambio de color. Estas pruebas involucran la adición de sustratos apropiados
al medio, junto con un sistema que permite la detección bien sea de su
degradación o de uno de los productos asociados con ella (Bridge, 2002).
LÍQUENES
Liquen deriva del latín lichen, dos seres simbióticos. La taxonomía de los líquenes no constituye un grupo natural
sino biológico, se los clasifica
dentro del reino Fungi. En efecto,
los líquenes son hongos (en su
mayoría Ascomycetes), que
se asocian con algas (Cloroficeas y Cianoficeas).
En ésta asociación los hongos, denominados micobiontes, son
los encargados de conformar generalmente la estructura tallina o cuerpo
vegetativo del liquen, y las algas o fotobiontes, los constituyentes
fotosintetizadores.
Atendiendo
a su morfología en cuanto a talos y la manera de adherirse al sustrato se
pueden distinguir varios tipos de líquenes:
·
Líquenes Fruticulosos
·
Líquenes Foliáceos
·
Líquenes Escamosos
·
Líquenes Gelatinosos
·
Líquenes Filamentosos
·
Líquenes Crustáceos
Unidos
al sustrato por una superficie de fijación reducida y con forma de pequeños
arbustos. Pueden ser cilíndricos, Usnea
y Alectoria, o laciniados, Evernia, Ramalina y Cetraria (distintas formas).
Reino: Fungi Reino:
Fungi
División: Lichenes Filo: Ascomycota
Clase:
Ascolichenes Clase: Lecanoromycetes
Familia:
Usneaceae Familia: Parmeliaceae Género: Usnea
Alectoria sarmentosa
Usnea australis
Reino: Fungi Reino:
Fungi
Filo: Ascomycota Filo: Ascomycota
Clase: Lecanoromycetes Clase: Lecanoromycetes
Familia:
Parmeliaceae Familia:
Ramalinaceae Musgo del roble Género: Ramalina
Evernia prunastri Ramalina canariensis
Se extienden sobre
el sustrato, fijándose a él mediante un conjunto de ricinas, Xanthoria o
Physcia, o por un solo
punto Umbillicaria y Dermatocarpon.
Reino: Fungi Reino: Fungi División: Mycota División: Ascomycota
Clase: Ascomicetes (liquenizados) Clase: Lecanoromycetes
Familia: Telosquistáceae Familia: Physciaceae
Especie: Lichen
parietinus Especie:
Physcia sp.
Xanthoria parietina Physcia
millegrana
Reino: Fungi Reino: Fungi Clase : Ascomicetes (liquenizados) División: Ascomycota
Familia: Umbilicariaceae. Clase: Eurotiomycetes Familia: Verrucariaceae
“Tripa de roca” Género: Dermatocarpon
Umbilicaria spodochroa Dermatocarpon miniatum
Se caracterizan por estar formados por un conjunto de
escamas cercanas entre sí y por presentar un borde no adherido al sustrato,
Ejemplo: Psora.
Distribución
geográfica: Poco frecuente, en peligro de extinción en
varias zonas geográficas del centro de Europa. Abundante en las montañas
calizas y yesíferas de la península.
Característica peculiar:
Inconfundible, sus escuámulas o areolas de talos
crustáceos, su color rojizo y sin dudas
muestran sus apotecios.
Reino: Fungi
Familia: Lecideaceae
No tiene nombre
común
Fig. Psora
decipiens
Adquieren una textura cuando menos flexible y pulposa al
encontrarse húmedos. En este estado pueden llegar a ser traslúcidos. (Este tipo
de líquenes son muy parecidos al liquen escamoso); talos gruesos, quebradizos
cuando se encuentran secos y muy blandos e hinchados en presencia de agua.
Reino: Fungi División: Ascomycota
Clase: Lecanoromycetes
Familia:
Collemataceae Genero: Collema
Collema
cristatum
Reino: Fungi División: Ascomycota
Clase: Lecanoromycetes Familia: Collemataceae
Leptogium phyllocarpum
Están constituidos
por una maraña de filamentos finos y de aspecto lanoso, Cystocoleus,
Racodium. (parecido casi
idéntico al fruticuloso).
Reino: Fungi
Filo: Ascomycota Clase: Dothideomycetes Familia: Cystocoleaceae
(se requiere
confirmación microscópica)
Leptogium peltigerales
Cystocoleus
ebeneus
Son el grupo más numeroso, agrupa a los líquenes que se
conocen fuertemente adheridos al sustrato, son mayoritariamente saxícolas
(viven sobre la roca), pero también hay especies cortícolas que viven sobre
superficies leñosas; folícolas que aparecen sobre hojas persistentes; lignícolas, sobre madera muerta;
terrícolas, sobre la tierra desnuda
y humícolas sobre el humus.
Reino: Fungi Reino: Fungi
Filo: Ascomycota Filo: Ascomycota Clase: Lecanoromycetes Clase: Lecanoromycetes Familia: Rhizocarpaceae Familia: Parmeliaceae
Reino: FUNGI
Filo: Ascomycota
Clase: Lecanoromycetes Familia: Teloschistaceae
Acarospora glaucocarpa
Rhizocarpon
geograficum
Caloplaca marina
ORGANIGRAMA
DEL LABORATORIO DE BIOLOGÍA - FCCBB
Departamento Académico
de
Biología
|
REFERENCIAS
BIBLIOGRAFICAS
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Guía de Practicas de Fitopatología. Departamento de
Fitopatología. Programa de Graduados, UNALM, Lima, Perú. 44 pp.
Agrios, G. N. (2002). Fitopatología. Sexta reimpresión de
la Segunda edición. Grupo Noriega Edits Balderas 95, México. 838 pp.
Castaño, J. (1986). Prácticas de Laboratorio de
Fitopatología. Edit. El Zamorano, Escuela agrícola panamericana. Colombia 45 pp.
Eyal, Z., A. L. Sharen, J. M.
Prescott, and M. van Ginkel. (1987) The Septoria
disease of wheat: Concepts and methods of disease management. Mexico, D. F. CIMMYT
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C. y R. Juncosa, (2002). Biopesticidas: ¿La agricultura del futuro?
Phytoma141
14-19.
Fribourg. C. (2007). Virus, viroides y mollicutes de las
plantas cultivadas. UNALM, Lima 219 pp
French, E. y T. Hebbert. (1982). Métodos de investigación
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USDA. Kansas State University. SANREM, CRSP: 24-18 abril. La Paz.
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Guzmán-Piedrahita, A.O, Castaño-Zapata J. y B. Villegas-Estrada. 2009. 17(2): 7 - 24. Diagnóstico de enfermedades de plantas
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Márquez, M., Martínez, M. M. y M. Franco. (2002).
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f. sp dianthi.
Agronomía Colombiana 19 (1-2): 81-87.
Mont, R. M. (2002). Manejo Integrado de
Enfermedades de las plantas. Ministerio de Agricultura, SENASA, impreso por VPI
gráficos. 210 pp.
Mont,
R. M. (2008). Enfermedades de la Cebada, el trigo y la avena en el Perú.
Identificación y Manejo Integrado Lima, Perú. 125 pp.
Olivos. M. I. (2006). Fitopatología
General. Impreso. Universidad Nacional Pedro Ruiz Gallo. Lambayeque, Perú. 108 pp.
ANEXO
1
Fig. 1. Abarquillamiento de las hojas del maíz
amarillo
Fig. 2. Secuencia de los
eventos de una simple colección de inoculación artificial de Septoria en campo de trigo (método
directo) I. colección de hojas simples.
II. Mantenimiento de la hoja sobre una lamina de vidrio con
picnidia. III. Inoculación de la hoja con picnidia en ambiente húmedo. IV.
Transferencia de esporas al medio con antibiótico. V. Transferencia de la
colonia de Septoria a tubo y
conservación por 20°C VII. Agitación de cultivos de S. tritici en medio liquido a 18- 20 °C VIII. Observación de
suspensión conidial y contaje de esporas IX. Aspersión de suspensión de esporas
conidiales en campo en días de lluvia o en noches húmedas. Tomado de: Septoria
Diseases of Wheat, Eyal, Z. et al (1987).
Fig. 3 Control biológico vs el control químico
hacia Sclerotium rolfsii in vitro con
agar Sabouraud.
Gli.
= Gliocladium sp. Str. = Streptomyces rimosus Tri. =
Trichoderma viridens
PCNB
= Pentacloronitrobenceno
Olivos, M.I (1995)
Fig,
4. Raíz
de tomate con nodos o agallas por Meloidogyne
sp-
Fig. 5. Meloidogyne
sp
UNIVERSIDAD NACIONAL PEDRO RUIZ GALLO
ESCUELA
DE BIOLOGÍA
Departamento
Académico de Biología
Guía de Prácticas de
Fitopatología
M. ISABEL OLIVOS
Lambayeque - Perú
2022- II
Caratula:
Figura 1. “Fumagina”
sobre hojas de Citrus aurantifolia –
Distr. J. Leonardo O., Chiclayo. 2021.
Figura
2. Virosis en Carica papaya “papaya” in Mercado Moshoqueque,
Chiclayo. 2021.
“Diagnóstico de enfermedades de plantas es un arte.
Progreso es el resultado de práctica. Es similar al progreso obtenido jugando golf o tocando
violín, asumiendo que uno tiene
aptitud para ello. Se requiere
mucho tiempo desarrollar
destreza. No hay sustituto para la experiencia”. Rubert B. Streets, Sr. 1972.
Tabla 1:
Especies bacterianas y las enfermedades que producen sobre los cultivos 25
Tabla 2: Especies fungosas y las enfermedades que producen
sobre los cultivos 27
Tabla 3: Especies
Peronosporaceae y las enfermedades que producen sobre los cultivos 28
Tabla 4: Especies
Moniliaceae y las enfermedades que producen sobre los cultivos 29
Tabla 5: Especies
Demateaceae y las enfermedades que producen sobre los cultivos agrícolas. 29
Tabla 6: Especies Demateaceae y enfermedades que producen
sobre los cultivos agrícolas. 30
Tabla 7: Especies de
Melanconiaceae y las enfermedades que producen sobre los cultivos agrícolas. 31
Tabla 8: Especies de
Mycelia Sterilia y enfermedades que producen en los cultivos agrícolas 31
Tabla 9: Especies de hongos Eurotiales y sus hospedantes. 33
Fig 1:
Peritecios oscuros de Ophiobolus graminis Sacc. (Gaeumannomyces graminis Arx
& D. L. Oliver) en las vainas foliares de arroz. 33
Fig 2: Basidiosporas
de un Agaricus bisporus (champiñón) Tomado de la Web. 36
Fig 3: Ciclo
de la roya de los cereales. Cortesía R. Mont. 40
Fig 4: Ciclo
biológico de Tilletia caries, B, C, E, G, I, tomado con permiso de los autores,
de Bunt or stinking smut of wheat (planografiado), 1941, Holton y Heald,
Burguess Publishing Co., 41
Fig 5:
Carbón del maíz amarillo en campo - Tucume-2002. 42
Fig 6: Ciclo
de vida del Ustilago maydis. Tomado de Fincham &c Day. 43
Fig 7:
Agaricus bisporus (champiñones). Empresa Pacus. Lima, Perú. Fototeca María I.
Olivos. 45
Fig 8: Bejin (Coprinus
sp. Basidiomicete). Fototeca. M. I. O. 46
Fig 9:
Sombrerito (Lepiota sp. Basidiomicete) 46
Fig 10 y 11: Setas ostra: Basidiomycetes (Figuras A y B) 47
UNIVERSIDAD NACIONAL PEDRO RUIZ GALLO
Facultad de Ciencias Biológicas
Departamento Académico de Biología
Asignatura: Prácticas de Fitopatología
Códigos:
BI 51019 - 04 A, BI 515 04 A
Créditos:
(4; 3)
Por
teoría: 3; Por práctica: 1
Pre
- requisito: Microbiología General
Las prácticas de Fitopatología tienen dos ambientes el de laboratorio
y campo, tienen el propósito de complementar
los conceptos vertidos en las clases teóricas con observaciones
objetivas. Es necesario que se tenga en cuenta que la enseñanza llevada
a cabo en el laboratorio es un medio de aprendizaje de los
estudiantes de Agronomía, Biología, Botánica y Microbiología.
Justificación
1.
Las prácticas de Fitopatología dan al estudiante habilidad
y confianza, así como también
las herramientas para la interpretación de las enfermedades de plantas,
para poder competir en el ejercicio profesional con eficiencia.
2.
Los conocimientos y habilidades
adquiridas permitirán al estudiante emprender proyectos de tesis de la
especialidad en la Escuela de ciencias agronómicas
y biológicas.
1.
Observar y describir con criterio
técnico, los síntomas y los signos de las enfermedades de las plantas alimenticias.
2.
Identificar, a través de técnicas de laboratorio,
reactivos y el microscopio compuesto binocular los principales patógenos de plantas.
3.
Conocer el ciclo de los patógenos y
de las enfermedades de las plantas de importancia local, regional y nacional.
4.
Capacitar al estudiante de las
ciencias biológicas, con énfasis en sus áreas de
de Biología, Botánica y Microbiología
le servirán para realizar una diagnosis etiológica elemental usando los métodos
y técnicas de laboratorio en
Fitopatología.
1.
Las prácticas se desarrollarán revisando las instrucciones de la Guía
respectiva, las que deberán leerse con antelación, la idea es que el estudiante
pueda informarse del tema a tratar durante una clase presencial y virtual.
a.
Pasos
parciales: Se tomarán 2 pasos parciales (ver calendario) de 30
min de duración.
b.
Examen
final de Prácticas: En este examen se tratará de verificar si el estudiante ha cumplido con los
objetivos planteados en la asignatura, por lo que versará en torno a cuatro
objetivos planteados.
Este examen consta de dos partes: Práctico y escrito.
Parte práctica: El estudiante identificará, con ayuda del microscopio por lo menos dos patógenos, de modo
análogo en el material herborizado y procedente del campo, reconocerá síntomas
y signos; la parte práctica tendrá un valor de 50% del examen final.
Parte escrita: constará de preguntas de opción múltiple y problemas de conocimiento
y criterio en solución de problemas de sanidad vegetal, esta parte tendrá un
valor del 50% del examen final.
Productos
acreditables (PA) y monografías: Se darán trabajos de
esta naturaleza, con el propósito de complementar algunos conceptos, e investigar.
Además, para que el estudiante conozca la bibliografía de la asignatura y use normas APA. Estos trabajos serán materia de preguntas en los pasos
parciales y examen parcial y final de prácticas.
d.
Ilustraciones: En las sesiones de prácticas
los estudiantes harán ilustraciones de diversos microorganismos, síntomas,
signos, ciclos de vida de patógenos y enfermedades. Los estudiantes deberán
presentar y hacer firmar las hojas de dibujos por cada práctica y para evaluar
al final de la asignatura de Fitopatología.
e.
Herbario: Se confeccionará un herbario original
con 10 síntomas y/o signos diferentes de enfermedades de plantas alimenticias, acorde
con las instrucciones dadas por su docente en la Guía de Prácticas; al pie de
cada espécimen herborizado deberán ir los datos de síntomas y signos siguientes:
Tipo
de síntoma/signo
Nombre
del síntoma/probable agente patógeno
Lugares
de recolección
Colector
(s)
Es necesario tener en cuenta, que a criterio de la docente
no se aceptaran aquellos herbarios que tengan ejemplares muy viejos o con características de haber sido utilizados
por otros estudiantes de los ciclos anteriores.
3.
Formas
de calificación: Cada tipo de evaluación para el promedio final de
prácticas, tendrá el coeficiente de ponderación siguiente:
Un
paso parcial: 1 Temas encargados: 2
Examen final de prácticas: 2
El promedio final de prácticas, tendrá un 10% de valor en
el promedio final de la asignatura de Fitopatología.
4.
Metodología y técnicas de enseñanza. En la sesión
de prácticas se empleará
15 a 20 minutos para las instrucciones generales más las respuestas de algunas
preguntas, para luego laborar las prácticas programadas del ciclo académico.
IV.
MATERIAL DIDÁCTICO
De
acuerdo a la naturaleza de la práctica se podrá emplear los siguientes
materiales y equipos: muestras biológicas frescas, PDF, PPT, videos, imágenes o
láminas con síntomas, signos y enfermedades observadas en condiciones de campo
y en el buscador de Google, diapositivas, lupas, cámaras húmedas, placas Petri,
agar PDA, agar Sabouraud, órganos vegetales frescos y afectados, microscopio
compuesto monocular, microscopio compuesto binocular y estereoscopio.
V.
MATERIAL NECESARIO
Los
estudiantes deberán tener para aula virtual y prácticas en el laboratorio de
Biología los materiales necesarios siguientes:
Guía de Prácticas de Fitopatología
Carpeta
con hojas A4 con documento Word en folder de manila para los informes de
práctica tamaño oficio.
Papel
bond A4 de 75 g
Textos o escritos con normas APA y si es con ordenador con letra Times
New Roman tamaño 12
Porta
y cubre objetos en número de seis unidades de cada uno
Estuche
de disección con un mínimo de una tijera y dos ajugas de disección.
Una
hoja de afeitar o bisturí
Órganos
vegetales diversos con síntomas o signos de enfermedad en condiciones
aceptables (No demasiado poco ni mucho).
Placas
de Petri 6 u
Tubos
de ensayo 12 u
Papel
toalla 2 u
Tápers plásticos transparentes de formas y tamaños
diferentes (2 u)
Una
fuente mediana de polietileno
Lápiz
de carbón número 2 o un programa en ordenador de dibujo Lápices de colores y
borrador
Plumones
de tinta negra indeleble
Papel
bond de 75 g; 100 u
Papel
periódico de reciclaje (500 u) para herborizar Tijeras de sastre y tijeras de
podar
Agua
destilada 4000 ml
Alcohol
de 90° 600 ml
Mechero de alcohol con mecha de hilo de algodón (pábilo)
Fósforos
una cajita
Estilete
o ansa bacteriológica/micológica Cinta scoch
Cámara
fotográfica Algodón un paquete
PROGRAMA DE PRÁCTICAS DE
FITOPATOLOGIA
1.
Instrucciones Generales de
prácticas: Descripción y Uso del microscopio compuesto,
selección, colección, conservación y envío de muestras afectadas o enfermas con
fines del diagnóstico fitopatológico y confección de un Herbario fitopatológico original.
2.
Síntomas y signos
3.
Síntomas y signos
del probable agente etiológico
4.
Clasificación de las enfermedades. Enfermedades
abióticas. Diapositivas/ppt/videos
5.
Enfermedades bióticas: virales,
fitoplásmicas, bacterianas, fúngicas. Presentación de diapositivas/video de
enfermedades virales, bacterianas,
fúngicas e informes de prácticas.
6.
Chitridiomycetes, Plasmodiophoromycetes y
Zygomycetes.
7.
Continuación de práctica 6. Presentación de diapositivas/ppt/video
8.
Enfermedades causadas por Chromistas u Oomycetes (Pythium spp., Phytopthora spp.)
9.
Enfermedades causadas por Ascomycetes (Erysiphe polygoni, Glomerella spp. Piricularia,
Geaumannomyces). Presentación en láminas,
diapositivas/ppt, video e informes
de práctica.
10.
Basidiomycetes: Carbones y royas en cereales y otros cultivos.
11.
Deuteromycetos. Enfermedades de
almácigo, radiculares, vasculares y manchas foliares.
12. Continuación de
práctica 11. Presentación
de láminas, diapositivas/ppt/pdf/word/videos
13.
Enfermedades causadas por nematodos y plantas superiores.
14.
Diagnosis. Identificación de patógenos, técnicas
de laboratorio y Postulados de Koch.
15.
Enfermedades causadas por algas y
plantas parasitas. Problemas más frecuentes.
16.
EXAMEN FINAL
DE PRACTICAS
USO
Y LIMPIEZA DEL MICROSCOPIO COMPUESTO
Al hacer uso de un microscopio compuesto, se debe efectuar
secuencialmente las siguientes
operaciones:
1.
Quitar la cubierta que protege al microscopio compuesto
2.
Limpie con un lienzo suave o papel
de lente, los sistemas ópticos: ocular, objetivos, espejo, condensador.
3.
Colocar la columna y el tubo óptico
en una posición adecuada de tal forma que permita trabajar cómodamente.
4.
Observar por el ocular y
oriente la lámina
con el condensador de tal forma que la luz se refleje a “la muestra” y la
abertura del diafragma hasta observar en el fondo del tubo un círculo blanco
uniforme.
5.
Colocar y sujetar la preparación sobre la platina
del microscopio compuesto.
6.
Enfocar la preparación, usar siempre el objetivo de
menor aumento (4X, 10X, 40X).
7.
Usando el micrométrico haga
descender el tubo óptico hasta lograr la imagen de la muestra.
8.
Dar nitidez a la imagen usando el tornillo micrométrico.
9.
Si desea observar a más aumento
cambie el objetivo de menor aumento, haciendo girar el revolver hasta el
aumento requerido, después proceda como en 7 y
8
10.
Para
observar con el objetivo de inmersión (100X) tener la precaución de bajar el
tubo óptico muy lentamente, lograda la imagen proceda como en 8.
11.
Terminada la observación ubique y
retorne el objetivo de menor aumento a su posición inicial.
12.
Limpiar el lente del objetivo de
inmersión inmediatamente después de su uso, para ello quite el aceite con un el
papel de lente, luego limpie con un segundo papel de lente impregnado en xilol,
finalmente secar con otra hoja de papel de filtro.
13.
Retirar la preparación microscópica usada y limpiar.
14.
Terminado el trabajo, colocar el microscopio
compuesto en su posición derecha.
15.
Colocar la cubierta
al microscopio compuesto. Evitar el polvo.
16.
Advertencia:
Dejar la mesa de trabajo del laboratorio en completo
orden y limpieza.
Nota: El xileno,
xilol o dimetilbenceno, C6H4(CH3)2 es el que se
obtiene a partir del Benceno.
Informe de Práctica 1 por
presentar el estudiante: Descripción, clasificación y
fundamento físico del Microscopio compuesto binocular y sus aplicaciones en las
Ciencias biológicas.
Docente: M.
Isabel Olivos F., Fitopatóloga.
COMO
COLECTAR, PREPARAR, Y ENVIAR MATERIAL VEGETAL PARA LA IDENTIFICACION DE
ENFERMEDADES DE VEGETALES
Los especímenes u órganos de plantas enfermas remitidas al Lab. de diagnóstico
fitopatológico, podrían llegar,
en pésimas condiciones porque el empaque es dificultoso y los especímenes
son siempre desventajosos (en los órganos suculentos).
Los especímenes demasiado
secos o en estado avanzado
de pudrición y aquellos que llegan sin la información necesaria deben ser descartados, eso representa lógicamente tiempo y labor malgastados por
el remitente y muchas dificultades para el personal del departamento de diagnóstico en Agronomía/Biología.
La Guía de Prácticas de Fitopatología dará algunos
pasos para los estudiantes,
agricultores o técnicos agrarios, que por una y otra razón deseen usar los servicios del laboratorio
de Fitopatología a fin de que se haga más fácil una labor de diagnosis por parte del personal
encargado y de esta manera reciban un buen servicio (Ames y Mattos, 1983).
Para que una muestra de planta afectada sea útil en la
diagnosis de una enfermedad es necesario considerar lo siguiente:
1.
Elección en buenas condiciones de la muestra
2. Los especímenes o
muestras deben llegar en buenas condiciones
3. Este acompañada de los
datos adecuados y actualizados
Una buena elección de la muestra o material enfermo
facilitará enormemente la labor de diagnosis clínica vegetal, para esto se debe
tener en cuenta:
a.
Cantidad: poca cantidad de material bien seleccionado es mejor que una gran cantidad tomada al azar.
b.
Claridad: los síntomas deben
ser tan claros como sea posible encontrar.
c.
Fases
de la enfermedad: colectar varias fases de la enfermedad es de gran
ayuda y permitirá observar el desarrollo de la enfermedad; es deseable incluir
material sano para compararlo con el material
enfermo.
1.
Plantas que muestran
marchitamiento, amarillamiento o decaimiento
general:
a.
Enviar las plantas completas
mostrando síntomas iniciales incluyendo raíces o partes de ellas.
b.
Desenterrar cuidadosamente la planta completa, sin trozarla
c.
Enviar muestra del suelo de la
rizósfera en la bolsa sellada a fin de evitar
el resecamiento.
a.
Seleccionar plantas de infección reciente.
b.
Enviar entera la porción cancrosa,
con algo de madera sana sobre y por debajo del cancro. Ramas y ramitas que han
estado muertas por algunos meses, son inútiles para la identificación del
patógeno y diagnosis.
a.
Colectar hojas mostrando estadios tempranos y
tardíos de infección.
b.
Es generalmente imposible
diagnosticar hojas que muestren quemaduras marginales porque ellas pueden
deberse a condiciones abióticas, enfermedades
radiculares o daños por productos agroquímicos.
c.
Remitir las diversas hojas enfermas
ubicándolas entre papel periódico u otro material
absorbente como papel secante.
a.
Las podredumbres de frutos frescos
delicados y verduras (papa, mangos, fresas, arándanos, cebollas y tomate)
necesitan una atención
especial. No se debe enviar en estado avanzado de descomposición.
b.
Escoja especímenes frescos mostrando síntomas iniciales.
c.
Envolver individualmente en hojas
de papel y acondicionar inmediatamente en caja de cartón resistente entre
aserrín/periódicos bien secos. No se debe agregar humedad extra, procurar guardarlos
en frio hasta su envío.
d.
Tener en cuenta que el
almacenamiento de material suculento en forma desordenada trae consigo pudriciones que hacen difícil
o imposible su diagnosis.
Una muestra fitopatológica para que llegue en buenas
condiciones y la remisión de esta a cualquier centro de estudios o diagnosis
debe ser lo más rápido posible y en un envase
más o menos hermético y si es posible en refrigeración a fin de evitar que los ejemplares lleguen secos o en
estado de descomposición.
1.
Envuelva el paquete en papel
fuerte. Tenga cuidado de no apiñar o apretar
las muestras de plantas.
2.
Embalar en una caja de cartón o de
plástico fuerte para prevenir el aplastado o machacado de las plantas durante
el transporte.
3.
Identificar los envíos con
etiquetas externas e internas; no ponga la etiqueta interna en contacto con la humedad.
4.
Despachar los envíos o paquetes de
modo que lleguen en días laborables y el
tiempo más corto.
5.
Marque los paquetes a nombre del Lab. de Biología o Fitopatología, Área de diagnosis.
Universidad Nacional Pedro Ruiz Gallo/UNALM.
Otros.
6.
Laboratorio de diagnosis efectuará los
exámenes de las muestras para determinar el agente causal sea este un virus, hongo,
bacteria, protozoo o un nematodo.
7.
El Laboratorio de Biología/Fitopatología
no diagnostica daños causados por artrópodos, problemas de suelos y por excesos
o carencias nutricionales.
INFORMACION QUE DEBEN ACOMPAÑAR A LAS MUESTRAS PARA EL
DIAGNÓSTICO FITOPATOLÓGICO
Las
muestras a transportar por trasporte aéreo o terrestre deben acompañarse de
datos e información adecuada. De esa manera se facilita la diagnosis ya que la
sintomatología se podrá relacionar con los mismos.
Se deberán acompañar entre otros los siguientes datos:
1.
Lugar de procedencia
2.
Fecha de colección
3.
Hospedante (nombre común, nombre
técnico, variedad, cultivar, clon, otros)
4.
Sintomatología observada
5.
Condiciones del clima del lugar:
temperatura, humedad relativa
6.
Otros datos: aplicaciones de
fungicidas, herbicidas, insecticidas, abonos orgánicos, secuencia de los
cultivos y otros.
7.
Importante: Tratar de efectuar una
apreciación de la intensidad (% de incidencia) del ataque, referida al
porcentaje y la magnitud de su presencia o
distribución en el área dada a conocer de la diseminación,
Referencias
Ames, T. y L. Mattos
(1983). Fitopatología. Departamento de Fitopatología. Programa de Graduados, UNALM, Perú, 41 pp.
Castaño, J. (1986). Prácticas de Laboratorio de
Fitopatología. Edit. El Zamorano, Escuela agrícola panamericana. Colombia 45
pp.
Fernández, C. y R. Juncosa. (2002). Biopesticidas: ¿La agricultura del
futuro?
Phytoma141; 14-19.
French, E. y T. Hebbert. (1982). Métodos de investigación
fitopatológica.
Costa Rica. 289 pp.
COLECCIÓN Y REMISION DE MUESTRAS PARA ANALISIS
NEMATOLÓGICO
Los fitonemátodos pueden
ser hallados en el suelo o dentro del hospedante, por ello para
efectuar el diagnóstico es necesario tener en cuenta ciertas consideraciones
para la elección y remisión de muestras
para análisis nematológico.
I.
ELECCION Y COLECCIÓN DE LA MUESTRA
1.
Eliminar los primeros 5 cm de la superficie del suelo de una ha del fundo agrario.
2.
Colectar porciones de suelo o
vegetal, tomados al azar dentro de 1 ha, hasta completar 1 kg de suelo.
3.
La profundidad de muestreo es
hasta la capa arable, es decir de que la muestra debe ser tomada hasta 20 -30 cm de la superficie del suelo.
4.
La colección de la muestra puede ser tomada de un terreno sin cultivo o en cualquier época de desarrollo del cultivo
(Por ej. maíz) en un terreno ya cultivado.
5.
Para la colección de plantas se
extrae aquellas que se sospecha estén atacadas por nematodos (plantas poco
desarrolladas, deformes, marchitas, otros.).
II.
CONDICIONES DE REMISIÓN
1.
El material muestreado será
colocado dentro de una bolsa de polietileno, asimismo, se incluirá una etiqueta
conteniendo la información necesaria, escrita con lápiz.
2.
La bolsa con el material colectado
debe ser sellado y colocado dentro de otra bolsa, se colocará otra etiqueta con
los mismos datos que en la anterior.
3.
Colocar las muestras en forma
ordenada en una caja. Evitar el calentamiento y resecado de las muestras.
4.
Enviar el paquete por vía de
transporte, de modo que lleguen en días laborables y lo más pronto posible.
Si no puede enviarlas inmediatamente guarde las muestras de
suelo en refrigeración (4° C) hasta el momento del envío.
5.
Marque los paquetes a nombre del
Laboratorio de Biología o Fitopatología, Universidad Nacional Pedro Ruiz Gallo,
Lambayeque, UNALM u otro laboratorio.
III.
INFORMACION QUE SE DEBERÁ ACCEDER A LAS MUESTRAS
1.
Marque las etiquetas con lápiz
mongol de carbón, no use lapicero,
2.
Cada etiqueta debe llevar la
información siguiente:
a.
Finalidad del muestreo
b.
Fecha
c.
Cultivo muestreado, cultivo
anterior y cultivo por sembrar.
d.
Lugar de muestreo, nombre del
fundo, propietario y ubicación geográfica.
e.
Otros datos, por ejemplo; uso de
abonos orgánicos, fertilizantes, nematicidas, herbicidas, insecticidas, y otros.
SINTOMAS
Y SIGNOS DE LAS ENFERMEDADES DE PLANTAS
Enfermedad.
- Es toda alteración bioquímica y fisiológica que se
produce en el normal funcionamiento de una planta.
Síntoma.
- Es la manifestación de la planta enferma en forma
notoria, puede ser detectada a través de la vista, gusto, tacto, olfato, otros.
Una enfermedad se expresa a través de una diversidad de síntomas, los que se
pueden combinar para formar síntomas más complicados.
Signo.
- Es la presencia visible del patógeno, bien sea en la
forma de una estructura vegetativa, reproductiva o de conservación. Ejms mildium,
oidío, exantema, roya.
Síndrome o cuadro. - Es el conjunto
de síntomas y/o signos de una enfermedad, que permiten la diagnosis de la misma. Ejm “rancha”, “arrosetammiento”
y “fusariosis”.
Clasificación
de síntomas. - Los síntomas se clasifican de acuerdo a los
siguientes criterios observados en el cultivo instalado en campo o invernadero:
a.
Generales:
cuando comprometen en forma total al cuerpo de la planta. Ejemplo: marchitez,
secamiento, enanismo, amarillamiento.
b.
Locales:
cuando se manifiestan en forma de cambios estructurales y/o fisiológicos de un
área limitada del tejido del hospedante. Por ejemplo: clorosis, nódulos, cancros,
quebradura de la nervadura principal en hoja de maíz morado, lesiones, otros.
a.
Síntomas
Primarios: cuando son el resultado de la acción directa del
patógeno sobre el tejido invadido. Ejemplo: necrosis de un patógeno fúngico radicular.
b.
Síntomas
Secundarios: cuando son el resultado de efectos fisiológicos
originados por el patógeno en órganos distantes y no invadidos por él. Por
ejemplo: La marchitez originada por la necrosis del sistema radicular, o cuando
es el resultado de la acción de un organismo saprofito que actúan después de
que el patógeno principal inicia su efecto.
a.
Síntomas microscópicos: son las alteraciones que solo es posible estudiarlas por el uso de técnicas
histológicas y con ayuda del microscopio.
b.
Síntomas
macroscópicos: son aquellos síntomas que se pueden observar a
simple vista y que se desarrollan en toda la planta o parte de ella. Estos se
dividen en:
A.
Pre necróticos
B. Necróticos
C. Atróficos
D. Hipertróficos
E. Complejos o especiales
A. SÍNTOMAS PRE NECRÓTICOS: Síntomas que preceden a la muerte de la célula.
1.
Marchitez: pérdida de turgencia de las hojas y
brotes generalmente debido a patógenos que afectan al tejido vascular o radicular.
2.
Enrojecimiento: son áreas de color rojo o
marrón rojizo que proceden a la necrosis, o bordes de igual coloración que preceden al avance de una necrosis
central, ejemplo: “sigatoka”
del plátano, el “damping off” en Fabaceae.
3.
Amarillamiento: pérdida de color verde normal,
debido a la desorganización protoplasmática que procede a la muerte de los
tejidos; ejemplo: las manchas amarillentas de los mildius afelpados y polvorientos.
B. SÍNTOMAS NECRÓTICOS: Son síntomas caracterizados por la muerte de las células de los
tejidos botánicos.
1.
Pudrición: condición de desintegración de los
tejidos; la pudrición puede ser seca, blanda, aromática, fétida y húmeda.
2.
Abolladuras: muerte de tejidos suculentos
justo debajo de la epidermis de frutos, tubérculos u órganos similares, dando
como resultado depresiones en su superficie.
3.
Momificación: es la deshidratación de los
tejidos muertos de órganos carnosos que no es seguida por ataque de organismos secundarios.
4.
Dieback o muerte regresiva: es una necrosis
descendente que se inicia en la parte apical de ramas y ramillas.
5.
Chupadera o damping off disease: son lesiones
hundidas de color marrón rojizo ubicadas a la altura del cuello de las
plántulas produciendo a menudo el tumbado. a). Chupadera o damping off pre emergente. - las semillas
se pudren antes de tomar la parte aérea. Ejm. Fusariosis, rizoctoniosis
b). Chupadera o
damping off post emergente. - las semillas germinan,
crecen y después de alcanzar la parte aérea, recién son afectadas por los
patógenos del suelo. Lo ocasionan Rhizoctonia,
Sclerotinia, Pythium, Phytopthora y Fusarium
asociado siempre a los nematodos. El control se hace con PCNB, Dexon,
Carbamatos (Farbam, Dithane,
Rhizoctol, otros).
6.
Cancros: son lesiones hundidas, de borde
generalmente suberificado, que se presentan en el tejido cortical y adyacente
de ramas y ramillas, frutos, raíces y tubérculos.
7.
Mancha necrótica: son áreas de tejido
necrótico de forma, color y tamaño variable, que se presentan más comúnmente en hojas. Cuando
son limitados por nervaduras se llaman manchas necróticas angulares.
8.
Escaldaduras:
lesiones necróticas a manera de ampollas en los que el tejido
el tejido se muestra
generalmente hundido y la epidermis
levantada. Son de color blanquecino y se presentan con frecuencia
en tejidos delicados de tallos, hojas y frutos.
9.
Anillo necrótico: son necrosis de forma
circular, formando a veces anillos concéntricos sucesivos. Necrosis en tabaco.
10.
Estría necrótica: manchas necróticas
dispuestas en líneas paralelas. Por ejemplo, estrías necróticas en hojas de maíz.
11. Quemaduras: manchas necróticas que abarcan áreas más o menos extensas y son
causados por agentes físicos o químicos. En la mayoría de los casos las áreas
necróticas abarcan el ápice y los bordes de las hojas.
12.
Perforación: son agujeros que se producen en
las hojas como consecuencia del desprendimiento del tejido muerto de las
manchas necróticas.
13.
Cuarteaduras: se presentan sobre los frutos,
ramas, tallos, por stress, sequia o causas fisiológicas, mal manejo de riego de
agua o por patógenos (Oídium sp.) en
melón, papayo, mango o cucurbitáceas.
14.
Lesiones foliares y del tallo: se observan
especialmente en hojas, son áreas necróticas de forma, color y tamaño variable,
también muy común en los tallos de
diversos cultivos, causados por virus, bacterias y hongos. Ejemplos:
Lesiones por la mancha carmelita (Helminthosporium
oryza), el quemado o bruzone (Piricularia
oryzae), la cercosporiosis (Cercospora
apii) y lesiones por Glomerella
cingulata.
15.
Corcho: son lesiones hundidas cuya superficie
color canela penetran hasta 4 mm.
16.
Pústulas, soluciones de continuidad o royas:
son soluciones de continuidad producidas por la rotura de la epidermis, como
consecuencia de la presión interior ocasionada por el desarrollo de uredosporas
y teliosporas de algunos hongos Uredinales en los Triticales: Puccinia hordei, Puccinia graminis.
C. SÍNTOMAS DE ATROFIA: Son síntomas caracterizados por subdesarrollo de órganos o de un
carácter que no sea tamaño, tal como la sub producción de clorofila.
a.
Sub producción de clorofila: es la falta del
color verde normal en los órganos de una planta, esta deficiencia toma el
nombre genérico de clorosis, pudiendo variar del color verde claro al amarillo
y algunas veces blanquecino.
1.
Aclareo: cuando la clorosis se encuentra
ubicada en las zonas comprendidas entre las nervaduras.
2.
Estrías cloróticas: es una forma de aclareo en
hojas de fabáceas, en donde la clorosis se presenta en forma longitudinal y
paralela a las nervaduras.
3.
Manchas cloróticas: cuando la clorosis se
presenta en forma de manchas más o menos circulares.
4.
Anillo clorótico: cuando la clorosis se
presenta en forma anular.
5.
Aclareo de nervaduras: cuando la clorosis se
presenta solo en las nervaduras.
6.
Amarillamiento: si la clorosis afecta grandes áreas
del limbo o abarca toda la hoja.
7.
Mosaico: Son manchas cloróticas irregulares distribuidos
desuniformemente en el área foliar que alternan con el verde normal de la hoja.
8.
Clorosis: es la ausencia de color verde normal
de las hojas, una parte o en todo el follaje de la planta. Ejemplo el virus mosaico
de la alfalfa (AMV).
9.
Enanismo: es la disminución del tamaño por causa de patógenos o agentes abióticos o por ataque del CMV o de
nematodos; Aunque puede ser una mutación o por autofecundación.
10. Epinastia: las hojas se disponen en ángulo de 90° en relación al tallo, como
sucede en el ají afectado por fusariosis.
11. Achaparramiento/arrosetamiento: es un acortamiento de entrenudos, dando la planta el aspecto de arrosetamiento. Se ha revelado
que se trata de falta de potasio
y de la presencia de virus.
12. Defoliación: se trata de la caída de las hojas, flores y frutos recién formados
por formación prematura de zonas de abscisión por acción del AIA. Ejemplo:
Potyvirus (PVY), tobacco streack virus (TSV).
13.
Ahusamientos:
los brotes tiernos
toman las formas de un husillo. Ejemplo
el viroide PSTV.
14. Vidriados o “manzanas
heladas”: se presenta por el relleno con savia de los
espacios intercelulares.
15. Foliocelosis: es un variegado de las hojas, con áreas fuertemente cloróticas en los
espacios intervenales que destacan sobre el resto de color verde normal,
reducción de la hoja. Aunque es probable que la planta necesite cal o materia
orgánica, pero un abuso de nitrato sódico puede evidenciar este síntoma.
16. Envanamiento o esterilidad: se presenta en los granos de las espigas
o en panículas de los cereales, la falta del endospermo y solo se
encuentran las glumas vacías.
b.
Sub-desarrollo de Órganos:
1.
Arrosetamiento: es la disposición de tallos y
hojas dando el aspecto de una roseta, como consecuencia del acortamiento de los entrenudos.
2.
Enanismo: falta de desarrollo. Toda la planta
o parte de ella de ella no alcanza el tamaño normal de la especie.
3.
Defoliación:
caída de hojas.
No hay que confundir este síntoma con la característica normal de ciertas plantas caducifolia.
4.
Aborto: caída de flores y frutos en formación.
D. SÍNTOMAS HIPERTRÓFICOS: Se caracterizan por un desarrollo excesivo de tejidos orgánicos y
pueden presentarse en la forma de:
1.
Escoba de brujas: es la proliferación anormal de raíces,
tallos o pedúnculos florales a partir de una gema.
2.
Sarna: Son lesiones más o menos circulares o
ligeramente levantadas, resquebrajadas o corchosas, se presentan en la superficie de los frutos,
hojas, tallos, tubérculos y raíces.
3.
Abarquillamiento: es lo contrario del caso del
encrespamiento, el parénquima del limbo crece a ritmo más o menos normal, no así las nervaduras lo que da lugar a que
se doble para arriba tomando como base la nervadura central.
4.
Encrespamiento: es cuando el limbo presenta
una conformación arrugada
debido a que las células del
parénquima de la hoja se hipertrofian, pero las nervaduras conservan su
conformación anterior.
5.
Fasciación: anormalidad consistente en la
unión de dos o más tallos o pedúnculos los que se sueldan en toda su longitud.
6.
Frondescencia: transformación más o menos
completa de las piezas de los verticilos florales, en órganos verdes de
estructura y aspecto foliáceo.
7.
Tumor/agallas, verrugas, nódulo: son
hinchazones o abultamientos debido a la proliferación y/o aumento del tamaño de
las células que conforman los tejidos.
8.
Callo: es un tejido de cicatrización generalmente suberificado que se forma al borde
de un cancro o herida.
9.
Escoba de brujas (Witches’ broom):
proliferación de órganos que se originan de una misma yema en caso de ramas y
flores. Ejemplo Marasmius perniciosus en
cacao.
10. Hernia: son hipertrofias presentes en la raíz de col, la cual se ve afectada
como es el caso del patógenos: Plasmodiophora brassicae.
E. SINTOMAS ESPECIALES O
COMPLEJOS: Son cuando debido a su naturaleza no se les
puede ubicar dentro de los síntomas pre necróticos, necróticos, atróficos o
hiperplásicos ya sea por no estar dentro de uno de ellos o por participar de
varios de estos síntomas.
1.
Tubérculos aéreos: producción de tubérculos en
la parte aérea debido generalmente a una lesión o estrangulamiento a la altura
del cuello, lo que dificulta o impide la translocación de sustancias de reserva
a los órganos de almacenamiento que son los tubérculos. Ejemplos: rizoctoniasis
y enfermedades pos Fitoplasmas.
2.
Exudación:
secreción de gomas, resinas o látex por causas parasitarias o no parasitarias. Cuando en el líquido exudado
se encuentra el patógeno bacteriano en suspensión constituye un signo.
3.
Descortezamiento: levantamiento, cuarteamiento
y desprendimiento del tejido cortical de troncos y ramas.
4.
Virescencia/verdeamiento: Es la visualización
de color verde en órganos en los que normalmente no se sintetiza la clorofila.
Ejemplo:
los tubérculos de la papa, pétalos, y los frutos.
5.
Deformación de órganos: es una alteración de
la forma normal de un órgano y se produce cuando hay la participación simultánea de varios
síntomas de un mismo órgano.
6.
Enrollamiento apical: es cuando la hoja
teniendo como eje longitudinal la
nervadura principal adopta la forma más o menos cilíndrica.
7.
Antocianescencia/Cromosis: es la coloración
anormal violácea o rojiza oscura de órganos tal como hojas y otros, debido a la
producción anómala de pigmentos de antocianina.
8.
Rugosidad: alteración en la cual se notan
pliegues o arrugas en las láminas de las hojas
o en los frutos.
SIGNOS DE LA ENFERMEDAD EN UNA DETERMINADA PLANTA
Los
signos de una enfermedad lo constituyen el patógeno causante de la misma, el
que puede estar presente en una de las diversas formas que a continuación se
enumera:
a.
Esclerocios: estructuras de conservación de los hongos que tienen forma redondeada
o achatada, de consistencia dura y de color negro o marrón y están formados por
hifas cortas frecuentemente muy soldadas
entre sí, ricos en reservas
y susceptibles de pasar a vida latente.
b.
Exudaciones: están constituidos por secreciones de la planta en forma de cera o
gomas y que generalmente encuentra entremezclada con estructuras propagativas
de hongos (esporas). En caso de enfermedades producidas por bacterias las
exudaciones son de apariencia ceroso como una especie de cera contiene una gran
cantidad de células.
c.
Espuma/fermentación: en tubérculos de papa almacenados a temperatura alta y oscuridad.
d.
Esporas/micelio/haustorio/himenio: son estructuras reproductivas y vegetativas propias
de los hongos. Tienen diversidad de formas y septos, y el micelio es de
apariencia algodonosa o en forma de tela de araña y está constituida por una
serie de filamentos de color blanquecino, gris, amarillo, plomizo o diferentes
tonos de marrón. Los haustorios son los órganos de absorción y se observa
en cortes histológicos de órganos de la planta
in vivo y el himenio es una
estructura macroscópica cargada de micelio muy
consistente.
e.
Conidias y oidiosporas, son estructuras reproductivas y propagativas que generalmente forman
agrupaciones o fructificaciones que tienen características especiales. Así tenemos:
f.
Royas.
- presentan como signo estructura denominadas soras que contienen gran cantidad
de esporas y que pueden ser de color amarillo, rojizo-anaranjado o marrón
oscuro, Son propias de hongos Uredinales y se les encuentra especialmente sobre
los tallos y hojas.
g.
Carbones.- son una masa pulverulenta de color marrón o negruzco, constituido
por masas de esporas y micelio de los Ustilaginales. Generalmente el almidón o
en órganos de reserva como los choclos del maíz amarillo blanco o amarillo duro.
h.
Mildius.
- se manifiestan en el envés de las hojas y tallos en forma de una pelusilla
aterciopelada de color blanco, plomizo o violáceo, esta pelusilla aterciopelada
de color gris o blanco está constituida por esporangióforos y esporangios de
los hongos Peronosporales.
i.
Oídiums.-
es una especie de polvillo blanco grisáceo constituido por micelio, oidióforos
y oidias de los hongos Erysiphales. Se le encuentra en cualquier parte aérea de
las plantas y puede hacerse presente en ambas caras de las hojas.
j.
Fumagina.- este signo se observa como una especie de “costra” de color negro o
marrón oscuro. Esta costra está constituida por el micelio y esporas de hongos
de los géneros Capnodium y Fumago que recubren tallos, hojas,
peciolos, pétalos y frutos de plantas que han
sido previamente parasitados por áfidos o queresas, porque
el hongo epifito
rara vez vive a expensas de la planta y utiliza las
secreciones azucaradas de las queresas.
k.
Moho:
es un signo formado por masas de esporas y micelio de hongos Aspergillus, Penicillium, Rhizopus y Mucor que comprometen especialmente
frutos suculentos o secos. El signo se distribuye en forma circular con una
coloración azul, verde o marrón de acuerdo
al organismo causante.
ENFERMEDADES
ABIÓTICAS EN LAS PLANTAS
Son desordenes fisiológicos de origen no parasitario,
puesto que son causados por factores inanimados y por lo tanto no son
fácilmente trasmisibles.
Las enfermedades abióticas se deben fundamentalmente a
condiciones adversas del ambiente en el cual desarrolla la planta y actúa en
forma individual o en interacciones inter o intra especificas provocando
“síntomas complejos” de difícil determinación. Las plantas se desarrollan parte
en el ambiente del suelo y parte en la atmósfera.
En
la Atmósfera los factores abióticos
importantes son:
Si las temperaturas son muy altas producen quemaduras y
ampolladuras (elevación local de la epidermis por acumulación de líquidos),
ambos síntomas son de tipo necrótico. Si las temperaturas son muy bajas
provocan la formación de cristales de hielo tanto dentro de las células como en
los espacios intercelulares (“heladas”).
Si la humedad
relativa de la atmósfera es muy baja, es importante sobre todo cuando hay interacción con la temperatura
alta, en cuyo caso se producen marchiteces.
La deficiencia de la luz solar produce síntomas de
clorosis, etiolación, alargamiento de los entrenudos, caída de las flores y
otros síntomas.
d. Lluvia, el viento, la nieve y el granizo
tienen un efecto mecánico como tumbado de plantas. También ocasionan el quebrado
de nervaduras de hojas, tallos, rotura, perforación de hojas y caída de hojas,
flores y frutos.
e. Los rayos, los relámpagos y los
truenos tienen una acción directa en forma de quemaduras y
provocan distorsión de los tallos.
f.
Las temperaturas frías, altas y la falta de aeración en almacenes producen
necrosis.
g. Presión atmosférica a una menor
presión atmosférica daría lugar a una menor apertura de las estomas, una menor cantidad
de C02 disponible para el cultivo, menor fotosíntesis y por ello una menor nutrición de
la planta.
h. Contaminación ambiental en
la forma de gases de invernadero, gases carburantes, hidrocarburos de petróleo
y residuos de fábricas produce quemaduras y
defoliación.
En el Suelo, entre otros factores que son importantes para la planta tenemos:
a.
Humedad
del Suelo, ya sea
deficiente o excesiva provoca síntomas de marchitez. El mal manejo del riego
provoca rajaduras en frutos y tubérculos.
b.
Textura
y estructuras inadecuadas inducen malformación de órganos
subterráneos, rotura de raíces y crecimiento pobre de las plantas.
c.
pH
del suelo tiene efecto sobre la disponibilidad de elementos que intervienen
en la nutrición de la planta.
d.
Composición química
del suelo en relación con los elementos que necesita la planta
para su desarrollo, la deficiencia de los cuales
puede provocar alteraciones y síntomas
complejos.
e.
Agroquímicos
mal aplicados, pueden incitar quemaduras, encrespamientos y
malformaciones en diferentes órganos de la planta tanto aéreos como en los
subterráneos.
VIRUS
FITOPATÓGENOS
Los
virus son entidades infectivas submicroscópicas que se multiplican únicamente
en el hospedante. Los virus causan en las plantas una serie de síntomas a veces
complejos, que en muchos casos pueden ser confundidos por otras causas. Sin
embargo, muchos de ellos a diferencia de otros patógenos vegetales pueden
provocar síntomas locales y generalizados. También tienen la particularidad de
que un mismo virus puede inducir síntomas diferentes en hospedantes diferentes.
I.
Los
síntomas locales: son aquellos que se manifiestan alrededor del punto
por donde la partícula viral penetró.
Manchas cloróticas: Ejemplo: TMV (Tobacco
Mosaic virus) en Chenopodium quinoa
Manchas necróticas. Ejemplo: TMV en Nicotiana glutinosa
Anillos
cloróticos: Ejemplo: PVX (Potato virus X) en Chenopodium
amaranticolor.
Anillos necróticos: Ejemplo: TRSV
(Tobacco ring spot virus) en Nicotiana
tabacum.
II.
Síntomas generales: Son del tipo sistémico, es
decir se manifiestan en toda la planta o gran parte de ella sin considerar el
punto por donde penetró el virus.
a.
Enanismo: Podría ser un crecimiento pobre de
toda la planta o de algunas de sus partes. Este síntoma es uno de los más
comunes en enfermedades causadas por virus.
b. Amarillamiento: No son muy numerosos los virus que causan este síntoma. Ejemplo: TRSV
en Nicotiana tabaccum
c.
Manchas cloróticas: Ejemplo CMV en pepinillo
d.
Estrías cloróticas. Ejemplo: CMV en achira
e.
Mosaicos: Este síntoma significa la
alternancia de color verde claro y oscuro en hojas o la alternancia de zonas
más coloreadas o menos coloreadas en frutos y flores. Es otro de los síntomas
más comunes ya que la mayoría de los virus tienden a presentar mosaico.
Ejemplo: TMV produce mosaico en plantas de tomate y frutos con áreas des
pigmentadas. TBV (Tulip breaking virus) produce la variegación de flores de tulipán.
f.
Anormalidades: En sus siguientes formas:
-
Hoja coriácea: Ejemplo: PLRV en papa.
-
Tumores: Ejemplo: WTV (Wound tumor virus) en trébol.
-
Deformaciones: Bien sea en reducción de partes
del limbo. Ejemplo: CMV que produce hojas filiformes en Nicotiana glutinosa o como retorcimiento de hojas. Ejemplo: TMV en
tomate.
-
Enrollamiento: Ejemplo: PLRV (Potato leaf
roll) en papa.
-
Epinastia o alteración en el ángulo de inserción: en cuanto a la unión de una hoja y el ángulo de inserción de los pedúnculos con el tallo puede ser mayor de 180°.
Ejemplo: TMV en ají.
-
Encrespamiento: Ejemplo: TVMV (Tobacco
vein mottle virus)
en Nicotiana occidentalis,
PVX más PVY en papa.
g.
Necrosis: Puede presentarse en sus formas de:
-
Estrías necróticas: Ejemplo: CMV en plátano
-
Necrosis generalizada: que se inicia desde el
ápice de la planta y avanzar hacia abajo como en el caso de TRSV en Vigna sinensis, o comenzar de la base de
la planta y avanzar hacia arriba como con PVY (Potato virus Y) en papa.
-
Anillos necróticos: Ejemplo: TRSV en Nicotiana
tabacum
-
Manchas necróticas: Ejemplo: PVY en papa.
BACTERIAS
FITOPATÓGENAS
Las bacterias son patógenas procariotas unicelulares que se
multiplican por división binaria y que pueden producir enfermedades del tipo
vascular, parenquimatosa o hiperplasia.
Enfermedades vasculares: se producen cuando hay obstrucción
del sistema vascular por la reproducción de bacterias en estos tejidos y por la
producción de ciertas sustancias por parte de la bacteria lo que impide el
libre fluido de los solutos dentro de la planta.
El
síntoma típico de marchitez por oclusión de vasos se presenta en las
infecciones producidas por
Ralstonia solanacearum.
Los
géneros Erwinia, Ralstonia, Xanthomonas generalmente
también producen estos síntomas.
Enfermedades hiperplasias: se caracterizan por la formación
de agallas, tumores y nódulos o por la formación de órganos adicionales a
partir de yemas adventicias. Los géneros Agrobacterium
y Rhizobium producen este tipo de
afecciones.
Tabla 1:
Especies bacterianas y las
enfermedades que producen sobre los cultivos
|
Especies bacterianas
|
Enfermedades que causan
|
|
Ralstonia
solanacearum - raza 2
|
|
|
Pseudomonas
savastonoi
|
Tuberculosis del
olivo
|
|
P. phaseolicola
|
Hielo amarillo del
frijol
|
|
Xanthomona
malvacearum
|
Mancha angular del
algodonero
|
|
X. phaseoli
|
Tizón común del frijol
|
|
X. rubrilineans
|
Raya roja en caña de azúcar
|
|
Erwinia stewartii
|
|
|
E. caratovora var.
carotovora
|
Pudrición en hortalizas
|
|
E. cartovora var.
atroseptica
|
Pierna negra de la
papa
|
|
A. tumefaciens
|
Agalla de la corona,
frutales de hueso y vid
|
|
A.
radiobacter pv. tumefaciens
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
PRÁCTICAS N° 7, 8
ENFERMEDADES CAUSADAS POR HONGOS
Los
hongos son organismos de gran importancia económica, pues muchos de ellos
causan enfermedades muy serias en plantas cultivadas.
El
cuerpo de los hongos está constituido por filamentos ramificados denominados
hifas, que en conjunto forman el micelio o estructura vegetativa.
Los
hongos son considerados como plantas inferiores y están incluidos dentro de la
división Mycota que comprende 2 subdivisiones: Myxomycotina y Eumycotina.
No
poseen micelio, la estructura vegetativa la constituye el plasmodio, el que a
la madurez da origen a los esporangios que constituyen esporas.
Cada espora al germinar deja en libertad zoosporas biflageladas.
Estructura vegetativa: plasmodio que se desarrolla dentro de un
hospedante.
Estructura
propagativa: por ejemplo, las zoosporas con dos flagelos desiguales, en forma de látigo. Las zoosporas pueden actuar
como gametos.
1. Plasmodiophora brassicae
Enfermedad: “Hernia de la col”
Síntomas: Agallas en el cuello
de las plantas y las raíces.
2. Spongospora subterránea
Enfermedad: “Roña o sarna
pulverulenta en la papa”
Síntomas: Presencia de pústulas en forma de cráteres en la superficie de los
tubérculos.
Son
los hongos verdaderos. Las formas más primitivas carecen de micelio, pero las
más evolucionadas poseen micelio bien desarrollado, el que puede ser cenocítico
o septado.
Estructura vegetativa: carecen
de micelio o de existir es muy rudimentario (rhizomicelio).
Estructura reproductiva:
zoosporas uniflageladas que actúan como gametos.
Especie: Synchytrium endobioticum
Enfermedad: “verruga de la papa”
Síntomas: Tumores grandes de
forma irregular sobre los tubérculos.
Especie: Physoderma zea-maydis
Enfermedad: “Mancha parda del
maíz”
Síntomas: Manchas cloróticas en las hojas y color castaño oscuro en la
nervadura central, nudos y entrenudos.
Especie: Physoderma alfalfae (Uroplyctis alfalfae)
Enfermedad: Agalla de
la corona de la alfalfa
Síntoma: Agallas blanca a gris parduzca en el cuello de la planta.
Estructura vegetativa: micelio cenocítico bien
desarrollado.
Estructura
propagativa: esporangios que pueden germinar dejando
en libertad zoosporas biflageladas uno en forma de látigo y el otro en forma de
plumilla o directamente produciendo micelio.
Estructuras reproductivas: tienen heterogametos, oogonio o
gametangio femenino que contiene la oosfera (gameto femenino) y el anteridio o
gametangio masculino contiene los anterozoides
que son los gametos masculinos. La unión de los gametos
de origen a la oospora (zigoto).
Familia:
Saprolagneaceae Especie: Aphanomyces
euteiches
Enfermedad:
Pudrición negra de la raíz de la arveja y haba Síntoma: Pudrición radicular
Familia Pythiaceae
Se
caracteriza porque la hifa y los esporangióforos son bastante semejantes. Los
esporangióforos tienen crecimiento indefinido.
Genero Pythium:
El
esporangio puede formar una vesícula donde termina de desarrollarse las
zoosporas.
Especies: Pythium debaryanum
Enfermedad: “chupadera fungosa”, pudriciones, varios Hospedantes: Especie: Pythium
ultimun
Enfermedad: “chupadera fungosa”, pudriciones, varios hospedantes.
Síntomas: Pudrición en raíces, tallos y frutos, chupadera fungosa.
Género Phytophthora:
El esporangio forma las zoosporas en la que no hay la
formación de vesículas.
Tabla 2.
Especies fungosas y
las enfermedades que producen sobre los cultivos
|
Especies
|
Enfermedades
|
|
Phytophthora infestans
|
“Mildiu”, “hielo” o “rancha”, lancha,
|
|
|
“Pudrición” en raíces, tubérculos,
manchas necróticas afelpadas en hojas.
|
|
Phytophthora capsici
|
“Pudrición radicular” Capsicum
|
|
Phytophthora palmivora
|
“Pudrición del fruto” del cacao
|
|
Phytophthora cinnamomi
|
“Pudrición radicular” del palto
|
|
Phytophthora erytroseptica
|
“Pudrición rosada” papa
|
|
Phytophthora parasitica
|
“Gomosis” de los cítricos.
|
|
Phytophthora megasperma
|
“Pudrición “ de las raíces de
Brassicaceae
|
|
Phytophthora cactorum
|
“Pudrición” del pepino y calabaza
|
|
|
|
|
Phytopythium spp.
|
“Pudrición” en papa y varios cultivos
|
En
este grupo existe diferencias morfológicas entre la hifa y los esporangióforos,
de crecimiento definido, son cortos gruesos, claviformes. A partir de los
esporangióforos se forman los esporangios en cadenas.
Especie:
Albugo candida
Enfermedad: “Roya
blanca” de las crucíferas
Síntomas: Pústulas
de color blanquecino localizadas en el envés de las hojas.
Los esporangióforos
son bien características, de crecimiento definido. Presentan ramificaciones
sobre la que se forman esporangios individuales. B.
lactucae presenta síntomas de manchas cloróticas en el haz
y en el envés presencia de una pelusilla blanquecina formada por
esporangióforos y esporangios.
Tabla 3.
Especies
Peronosporaceae y las enfermedades que producen sobre los cultivos
|
Sclerospora macrospora
|
“Mildiu” Caña de azúcar
|
|
Plasmopora viticola
|
“Mildiu de la vid”
|
|
Peronospora effusa
|
“Mildiu” quinua, espinaca
|
|
Peronospora destructor
|
?
|
|
Peronospora parasitica
|
“Mildiu” de la col
|
|
Peronospora trifoliorum
|
“Mildiu” de la alfalfa
|
|
Pseudoperonospora cubensis
|
“Mildiu de la cucurbitaceae
|
|
Bremia lactucae
|
“Mildiu” de la lechuga
|
Estructura vegetativa: Micelio
cenocítico
Estructura reproductiva: la reproducción sexual se realiza por la fusión de porciones de hifa
que actúan como gametos y dan como resultado la formación de una zygospora.
Especies:
Rhizopus nigricans Rhizopus
stolonifer
Síntomas:
Pudrición húmeda en órganos carnosos como el camote y frutos como fresas,
melocotón, chirimoya.
Esta clase-forma incluye un gran número de patógenos que
afectan a diversos cultivos. Existen unas 15.000 especies. Presentan hifas
septadas que puede fragmentarse y originar conidias. Las estructuras
propagativas están constituidas por conidióforos en cuyo ápice se insertan las
conidias. Estos pueden ser libres o agrupados formando esporodoquios y synemas,
o hallarse dentro de cuerpos fructíferos denominados picnidios y acérvulos.
Estructura de
reproducción sexual, están consideradas en otras
clases, pudiendo recaer en: Zygomycetes, Ascomycetes y Basidiomycetes.
Las especies en Deuteromycetes
se incluyen en tres grupos: 1. Blastomycetes,
presentan un soma formado por células con aspectos de levadura, con o sin
seudomicelio, si tienen micelio verdadero nunca está bien desarrollado. 2. Coelomycetes, hongos con micelio
septado bien desarrollado que se reproducen mediante conidios que se forman en
picnidios o acérvulos; y el grupo 3. Hyphomycetes,
son hongos con hifas septadas bien desarrolladas y los conidios nunca están
dentro de picnidios ni acérvulos.
Orden-Forma Moniliales. -
Familia-Forma Moniliaceae: Los conidióforos y conidias son hialinos.
Tabla 4.
Especies Moniliaceae y las enfermedades que producen sobre los cultivos
|
Especies
|
Enfermedad
|
|
Botrytis
cinerea/Botryotinia fuckeliana
|
“Pudrición gris” en arándano y naranjo
|
|
Verticillium
albo-atrum
|
“Marchitez” del algodonero
|
|
Monilia
fructicola
|
“Pudrición del fruto” melocotonero
|
|
Oidium
spp.
|
“Oidiosis” polífago
|
|
Geotrichum
candidum
|
“Pudrición” Tomate, melocotonero
|
Familia - Forma Demateaceae: Los conidióforos y conidias son oscuros.
Tabla 5.
Especies Demateaceae y las enfermedades que
producen sobre los cultivos agrícolas
|
Especies
|
Enfermedad
|
|
Pyricularia
oryzae
|
“Quemado”, “quema”, “bruzone” en arroz
|
|
Cercospora
coffeicola
|
“Mancha foliar” del cafeto
|
|
Thielaviopsis
basicola
|
“Podredumbre radicular” del algodonero
|
|
Stemphyllium
botryosum
|
“Moho foliar” en cebolla
|
|
Bipolaris
turcicum
|
“Mancha foliar” en maíz
|
|
Alternaria
alternata
|
“Mancha foliar” algodonero
|
|
Alternaria
solani
|
“Alternariosis”, “Tizón temprano” en papa
|
|
A.
brassicae
|
“Alternariosis”,“Tizón temprano” en papa
|
|
A.
dauci
|
“Alternariosis”, “Tizón temprano”, papa
|
|
A.
tenuis
|
“Alternariosis”, “Tizón temprano”, papa
|
|
A.
tenuissima
|
“Alternariosis”, “Tizón temprano”, papa
|
Familia - Forma Stilbaceae: Los conidióforos forman un synema
Especie: Isariopsis clavispora
Enfermedad: “Mancha foliar” – vid
Familia- Forma Tuberculareaceae: Los conidióforos forman
esporodoquios.
Especie: Fusarium moniliforme,
F. lini, F. solani
Enfermedad:
“Chupadera fungosa”, “Pudrición radicular”, varios hospedantes
Síntomas: Las especies de esta familia pueden causar
pudriciones, marchitez, manchas foliares y damping off o “chupadera fungosa”.
Fusarium oxysporum f. sp. cubense Raza T Foc. “Mal de Panamá”,
“Fusariosis”, “Pudriciones radiculares”
Grupo
Coelomycetes
Orden
- Forma Sphaeropsidales /Phomales
Los conidióforos y conidios se hallan dentro de un
cuerpo fructificante en forma de botella que recibe el nombre de Picnidia.
Familia
- Forma Sphaeropsidaceae.- Posee picnidia de color oscuro, con ostiolo
definido, conidióforos cortos hialinos.
Tabla 6.
Especies
Demateaceae y enfermedades que producen sobre los cultivos agrícolas
|
Especies
|
Enfermedad
|
|
Ascochyta
pisi
|
“Antracnosis” arveja
|
|
Septoria
apii
|
“Mancha foliar” apio
|
|
Diplodia
natalensis
|
“Gomosis de las ramas” - naranjo
|
|
Diplodia
zeae
|
“Pudrición seca de maíz”
|
|
Dendrophoma
sp.
|
“Manchas foliares” color purpura.
|
|
Macrophomina
phaseolina
|
“Podredumbre carbonosa”
|
|
Phoma
cactorum
|
“Pudrición” en cactus
|
|
Phomopsis
citri
|
“Melanosis”, “Cancro gomoso” cítricos
|
|
Phyllosticta
phaseolina
|
“Mancha foliar” y en legumbre frijol.
|
|
Lasidiploidia
(Botryodiplodia) theobromae
|
“Muerte regresiva” mango, palto, cítricos y
otros cultivos hortofrutícolas.
|
|
Pyronochaeta
terrestris
|
“Raíz rosada” - cebolla
|
|
Septoria
graminnicola, S. nodorum
|
“Manchas” ,“lesiones” en cultivos: ?
|
|
Leptosphaeria
nodorum
|
“Manchas”, “lesiones” en ?, fase:?
|
|
L.
microscópica
|
?
|
|
L.
avenaria
|
?
|
Orden - Forma Melanconiales.- Los conidióforos y conidias se
encuentran en un cuerpo fructificante en forma de plato denominado “acérvulo”.
Las conidias están reunidas en una masa mucilaginosa, a veces es posible
observar alrededor o entre la masa de esporas las estructuras largas, gruesas
oscuras (setas).
Familia - Forma Melanconiaceae. - Los acérvulos presentan
color blanco, crema, anaranjado, negro. Los cuerpos fructififeros se
desarrollan debajo de la cutícula o epidermis del hospedante y generalmente
irrumpen a la madurez.
Tabla 7.
Especies de
Melanconiaceae y las enfermedades que producen sobre los cultivos agrícolas
|
Especie
|
Enfermedad
|
|
Gloesporium
orbiculare
|
“Mancha del fruto” Cucurbitaceae
|
|
Colletotrichum
lindemuthianum
|
“Antracnosis”, “Antracnosis” Frijol
|
|
Pestalotia
guepini
|
“Mancha foliar”, “Antracnosis” parte aérea
en palto.
|
Orden - Forma Mycelia Sterilia. - No poseen conidias, sin estructuras
sexuales.
Tabla 8.
Especies de
Mycelia Sterilia y enfermedades que producen en los cultivos agrícolas
|
Rhizoctonia
solani
|
“Chupadera” Varios cultivos
|
|
Sclerotium
rolfsii
|
“Pudrición del cuello”, “Pudrición basal”
Varios cultivos
|
|
S.
oryzae
|
“Pudrición basal” en cultivo de arroz
|
|
S. cepivorum
|
“Pudrición blanca” ataca cebolla
|
CLASE
ASCOMICETOS
Los Ascomicetos al igual que los Basidiomicetes son hongos
superiores porque poseen estructuras más complejas de reproducción sexual.
Estructura vegetativa: Micelio septado.
Estructura
propagativa: Conidias que a veces se presenta en un
hospedante distinto al de las estructuras sexuales, por lo que un principio se
pensó que eran especies distintas. Esto originó que a las estructuras asexuales
se les diera otro nombre.
Por conveniencia y para evitar confusión, en la literatura
se les sigue llamando a los Ascomycetes con dos nombres correspondientes a la fase asexual y sexual. Las fases
asexuales sin embargo están consideradas en la Forma-Clase Deuteromycetes.
Estructuras
reproductivas; el ascogonio o gametangio femenino y el
anteridio o gametangio masculino. La unión
de los núcleos de los 2 gametangios da origen a las
ascas que contiene generalmente 8 ascosporas. Las ascosporas constituyen las
estructuras propagativas de origen sexual.
La mayoría de los Ascomycetes tienen sus ascas encerradas
en una estructura que toma el nombre genérico de ascocarpo pero de acuerdo a su
forma y otras características puede ser un cleistotecio, peritecio o apotecio.
Otro grupo de Ascomycetes tienen sus ascas dentro de los
lóculos formados en un estroma que está constituido por un conglomerado de
hifas.
1.
Sub-Clase
Hemiascomycetes: Presentan un ascocarpo con ascas libres generalmente
emergen a través de la epidermis del hospedante.
Especie: Taphrina (Exoascus) deformans
Enfermedad: “Cloca” del
melocotonero
Síntomas: Encrespamiento de las hojas las que además toman un tinte clorótico o
rosado brillante. La enfermedad se manifiesta especialmente en las hojas más
tiernas del ápice de las ramas.
2.
Sub-
Clase Euascomycetes: Las ascas están contenidas en un ascocarpo.
SERIE I:
Plectomycetes. - El ascocarpo es un cleistotecio que puede ser
completamente cerrado o puede tener un ostiolo.
Las ascas dentro del cleistotecio están distribuidos
desordenamente y a la madurez se desintegran.
Géneros:
Aspergillus y Penicillium (anamorfos); Eurotium
repens (teleómorfo)
Enfermedades: “Pudriciones”
y “mohos” en tonos diversos (síntomas).
SERIE II: Peronomycetes. El ascocarpo es un peritecio. El peritecio puede ser completamente
cerrado o estar provisto de ostiolo, pero las ascas están distribuidas de forma
ordenada.
Orden Erysiphales: Fitoparásitos obligados que causan la enfermedad conocida como “oídium” o “mildiu polvoriento”.
Estructura vegetativa: micelio septado y hialino que crece en
superficie del hospedante penetrando solo sus haustorios a las células
epidérmicas. Excepciones de esta regla son Leveillula
taurica y Phyllactinia corylea que
introduce su micelio más profundamente.
Estructuras propagativas de origen asexual: oidias que se
forman solitarias o en cadena en el extremo de los oidióforos.
Estructuras reproductivas de origen sexual: Ascosporas que
se forman en ascas de forma globosa. El cleistotecio que encierra las ascas
puede estar provisto de apéndices de forma y longitud variados. El cleistotecio
es la estructura de conservación de estos patógenos.
Figura 1: Peritecios oscuros de Ophiobolus
graminis Sacc. (Gaeumannomyces graminis Arx & D. L. Oliver) en las vainas
foliares de arroz. (Olivos, M. I. 1979).
Tabla 9.
Especies de hongos Eurotiales y sus hospedantes
|
Especies
|
Hospedantes
|
|
Salmonia
malachrae, Leveillula táurica (Oidiopsis
gossypii)
|
Algodonero
|
|
Erysiphe polygoni (Oidium balsamii)
|
Frijol, soya, arveja, tacón, lechuga.
|
|
Erysiphe cichoracearum (Oidium
ambrosiae)
|
Melón, sandía, zapallo, calabaza,
girasol, papa.
|
|
Sphaerotheca pannosa (Oidium
leucoconium)
|
Melocotonero, rosal
|
|
Podosphaera leucotricha (Oidium spp.)
|
Manzano
|
|
P. oxycanthae (Oidium erataegi)
|
Cirolero
|
|
Oidium caricae
|
Papayo
|
|
Erysiphe graminis tritici (Oidium moniliodes)
|
Trigo
|
|
Erysiphe graminis hordei
(Oidium
moniloides)
|
Cebada
|
|
Erysiphe graminis avenae
(Oidium
moniloides)
|
Avena
|
|
Uncinula necator
|
Vid
|
|
Oidium spp.
|
Mango, palto, yuca,
casuarina
|
El síntoma de la enfermedad es una pulverulencia blanca
grisácea en la superficie aérea de la planta. Ataques
severos provocan defoliación, necrosis de tallos,
caída de flores, deformación
y caída de frutos.
Orden Sphaeriales: Presentan peritecios coriáceos o carbonosos, esféricos, globosos o
piriformes con ostiolo y parafisas evanescentes; inmersos en los tejidos.
Especies: Phyllachora graminis parasita gramíneas
causando manchas cloróticas en las hojas, Ophiobolus
oryzinus (Gaeumannomyces graminis Arx
& D. L. Oliver).
Orden Diaphorthales:
las ascas tienen pedúnculos cortos evanescentes.
Genero Glomerella:
es la fase sexual de los géneros Gloesporium
y Colletotrichum
Especie: Glomerella
cingulata
Enfermedad: “Pudrición
amarga” de la manzana
Síntomas: “Escaldaduras” de color castaño oscuro en los
frutos: El signo se observa como pequeñas protuberancias negruzcas que son
peritecios o acérvulos que desarrollan gran cantidad de esporas de color salmón
rosado. Posteriormente el hongo produce pudrición del fruto.
Orden Clavicipitales: Produce peritecios dentro de un estroma bien desarrollado, las ascas
son largas y cilíndricas con un poro por el que salen ascosporas filiformes. Estroma: estructura vegetativa compacta
sobre o dentro de la cual se forman otras fructificaciones.
Especie: Claviceps
purpurea
Enfermedad: “Cornezuelo del centeno”, la característica de esta enfermedad es el
signo que se observa como un esclerocio
negruzco situado en las espigas de los cereales: Estos esclerocios caen al
suelo, germinan y producen los estromas que contienen los peritecios.
Producen ascocarpos abiertos llamados apotecios que tienen
forma de copa o disco de variados colores. Los apotecios llevan ascas
claviformes o cilíndricos en la superficie. Entre las ascas se intercalan
parafisas. Las especies causan pudriciones marrones en maderas, tanto en Europa
cómo América en frutales de pomo y hueso, fresas y arándanos.
Ordenes Importantes:
Orden Helothiales: Apotecios en forma de copa o disco, ascas levemente engrosadas en el
ápice, ascoporas redondas o elípticas.
Especies:
1.
Monilia fructicola (Wint). Honey y Monilinia laxa (Aderh. & Rubl) Honey.
Enfermedad:
“Pudrición morena del melocotonero”, “Pudrición marrón” Síntomas: Pudrición seca y momificación de los frutos.
2.
Sclerotinia sclerotiorum
Enfermedad: “Pudrición blanda de las hortalizas” o “moho blanco”
Síntomas: Chupadera pudrición de la parte del cilindro central del tallo. El signo se observa como micelio blanquecino
que se extiende en la raíz, cuello y hojas inferiores. A partir del micelio se
forman esclerotes y de estas estructuras de conservación se forman apotecios.
3.
Pseudopeziza medicagines
Enfermedad: “Mancha negra de la alfalfa”
Síntomas: Manchas circulares negruzcas en las hojas. El apotecio es en forma de
disco castaño oscuro muy pequeño que se presenta en el centro de la mancha.
Las ascas se forman
dentro de los lóculos de un estroma.
Orden Dothidiales: ascas bitunicadas, dispuestas en fascículos, no presenta parafisas.
Especie: Mycosphaerella musicola
Enfermedad: “Sigatoka” del
plátano
Síntomas: manchas cloróticas o necróticas, ovales o circulares, grises,
rodeadas por un anillo bruno oscuro.
Orden Pleosporales: ascas se forman entre seudoparafisas que son filamentos que se
originan en la pared superior del lóculo y crecen hacia abajo.
Especies:
1.
Venturia inaequalis
Enfermedad: “Sarna del manzano”
Síntomas: Manchas negruzcas en las hojas: En los frutos se producen lesiones
corchosas: Los frutos pueden resquebrajarse y deformarse.
2.
Physalospora perseae
Enfermedad: “Antracnosis del
palto”
Síntomas: Cancros en las ramas, troncos. En los frutos se presentan cancros
hundidos, rojizos pardos. El centro de estas marchas es de color rosado.
Orden Helotiales: Inoperculados, ascos engrosados en los ápices y ascosporas redondas o
en elipse.
Especies: Monilia fructigena (M. fructicola), Monilinia
roreri, Moniliophthora roreri.
Enfermedad: “Pudrición” de frutos
de corozo ¿? y pepita
Presentación de informe de prácticas por el
estudiante de Agronomía/Biología
- Estructuras morfológicas del hongo Botryotinia
fuckeliana
-
Ciclo biológico de Erysiphe necator
-
Describa Ud. en la orden fungosas a continuación, una familia, mencione 5 especies
y el control de los Capnodiales
-
Qué tipo de enfermedades controla el fungicida NATIVO.
Redactar
sus informes y todo documento académico usando el estilo APA
Participación
de los estudiantes y cumplimiento de presentar los informes de práctica.
Los
Basidiomicetes presentan una estructura especializada denominada Basidia (uni o multiseptada) con
esterigmas que sostienen 4 basidiosporas (AB, Ab, aB, ab) dentro de un basidiocarpo de diferente forma
(resupinado, cerebriforme, conchiforme, pedicelado). Hifas con células
binucleadas (dicarióticas), septas tipo doliporo (excepto royas y carbones); el micelio primario o promicelio, proviene
de germinar una basidiospora, generalmente es muy fino uni o multinucleado, sin
flagelo; siempre requiere unirse de otro promicelio para formar un micelio secundario.
La condición dicariótica proviene de la fusión de 2 células
uninucleadas, las cuales unen sus protoplastos más no sus núcleos; la célula
binucleada producto de la fusión se ramifica y cada una de las células resultantes
conservan 2 núcleos. Otra forma de dicariotizarse el micelio es cuando dos
basidiosporas germinan, forman un promicelio y al extremo del cual migran los
núcleos, estos 2 promicelios se atraen, se anastomosan y la célula resultante tiene la condición dicariótica, pared celular con quitina, provisto
de interconexiones celulares
externas: asas, clampas y
fíbulas; constituyen el grupo más evolucionado de los Fungi.
Se incluyen hongos comestibles y alucinógenos que
sintetizan toxinas, enzimas, alcaloides y ácidos orgánicos. Algunos
basidiocarpos macroscópicos comúnmente conocidos como “orejas de palo” (Chandrostereum purpureum) y píleos
semejantes a un pequeño paraguas Agaricus
sp, (Armillaria mellea).
Forman varios tipos de esporas durante su ciclo de vida por
lo que los hongos causantes de “royas” producen: uredosporas, teleutosporas,
picnidiosporas, aeciosporas y basidiosporas.
R. asexual: yemas,
fragmentación del micelio, conidias (oidios, oidióforos en el agaricáceo Coprinus lagopus) en su forma imperfecta
le corresponde a un ascomiceto; y por artrosporas.
Figura 2: Basidiosporas
de un Agaricus bisporus (champiñón) Tomado de la Web.
Otros
hongos causantes de “carbones” y “tizones” producen teleutosporas (clamidosporas)
y basidiosporas o esporidias, se producen sobre un promicelio (probasidio) que
resulta de la germinación de teleutosporas. Causan enfermedades de difícil
control, aunque no son serios problemas en hortalizas (chalote, puerro y ajo), diseminándose
por el viento, semillas, los seres humanos y animales.
Basidias septadas,
multicelulares, parásitos de plantas y musgos.
Tremellales. - hongos de consistencia
cartilaginosa, gelatinosa, saprobios o parásitos de plantas y de querezas.
Basidias con septas transversales y divisiones verticales formando dos
epibasidias. Ejemplo: Tremellodendron sp.
Auriculariaceae: Auricularia auricularia, Helicogloea,
Helicobasidium
Ceratobasidiaceae: Ceratobasidium sp. son hongos
gelatinosos.
Dacrymycetaceae: Dacrymyces deliquesces. Hongos
gelatinosos de color amarillo- naranja por el beta caroteno.
Tremellaceae:
incluye hongos gelatinosos o pedicelados: Tremella
fusiformis, Tremellodendrum sp. (Producto gastronómico chino).
Septabasidiaceae:
basidiocarpo difuso, casi polvoriento, Septobasidium
fumigatum, Uridinella sp. son parásitos de insectos (querezas).
Uredinales. - Son parásitos obligados
en helechos, coníferas y angiospermas; desarrollan el micelio intercelularmente y están
provistos de haustorios que extraen
nutrientes y en madurez emergen del tejido de la planta rompiendo la epidermis,
formando pústulas o soras
superficiales que contienen gran cantidad de esporas, diferentes, de acuerdo al
tipo de fructificación, ya que,
durante el ciclo de vida, pasan por diferentes fases. Causan enfermedades
conocidas como las “Royas” en la parte aérea de la planta.
En el Perú se menciona desde 1687 en la que afectó los cultivos de trigo de la costa peruana
hasta desaparecerlo por completo.
Las informaciones de esa época, nos dice de la aparición de
un “polvillo” sobre los trigales, y cuyo efecto se reflejaba en una disminución
de los rendimientos. En la sierra peruana se encuentra también las tres royas, pero predominan y hacen serios
daños, la roya negra, hasta los 2 500 msnm, la roya amarilla o
de las glumas sobre los 3 000 msnm.
El síntoma es una pústula, el hongo se desarrolla en los
espacios intercelulares y forma los haustorios, una vez maduro
rompe la pared y
produce gran número
de síntomas consistentes en pústulas (Basidiocarpo
resupinado) en hojas, vainas, tallos y glumas. En valles de Chao y Virú, se
presentan epifitias de royas en espárrago.
Los Uredinales son hongos parásitos absolutos, durante su ciclo de vida pasan por
cinco fases:
1.
0 = Pycnia o espermogonia (n):
picniosporas (Berberis vulgaris).
2.
I = Aecia o ecidios (n+n): aeciosporas;
amarillas, hospedante intermediario: B.
vulgaris
3.
II = Uredo (n+n): uredosporas, Triticum;
anaranjado o herrumbre. Reinfecta trigo por estomas.
4.
III
= Telia (2n): teliosporas, Triticum; pústulas oscuras; al final de la estación, sobreinvernan
5.
IV = Basidia o Promicelio (n): basidiosporas,
sobreinvernan; al germinar originan las Pycnias.
De
acuerdo a esas fases durante el ciclo de vida las royas pueden ser clasificadas
en:
i.
R. demiciclicas.- generalmente
tienen la fase O, I, III y IV, falta la fase
II.
ii.
R. microcíclicas.- royas que
presentan las fases 0, III y IV.
iii.
R.
macrocíclicas.- royas en la que por lo menos se presentan dos
estados dicarióticos y son de ciclo largo.
iv.
R. autoica se pueden presentar
todas las fases en una sola especie vegetal, por ejemplo
Puccinia asparagi, Uromyces phaseoli, Melampsora
lini.
v.
R.
heteroica es cuando unas fases se forman en la misma especie de
planta y otras fases en otros hospedantes. La roya requiere de un hospedante
alternante que depende del tipo de roya por ejemplo Puccinia graminis tritici, su principal hospedante es trigo y el
hospedante alternante es el agracejo: B.
vulgaris (picnia y aecia). Uromyces
caryophyllinus (roya del clavel)
fases II y III; 0 – I, en las
especies de Euphorbia sp.
La fase Telia/teliospora
al germinar produce basidiosporas de diferente signo y penetran al tejido de Berberis sp., se desarrollan y forman las estructuras que se
conocen como picnias o espermagonias conteniendo las
espermatias o gametos masculinos, y en la parte externa en forma de flequillo
se encuentran las hifas fértiles
o gametos femeninos, al ser compatibles se forman las hifas
dicarióticas y en el envés de la hoja se forma la pústula, que viene hacer una
aecia con aeciosporas, las que por acción del viento caen sobre las vainas
foliares del trigo, germinan
y penetran, se desarrollan y luego en base a este tejido se forma
otro tipo de pústula de color
marrón, es un Uredo con las uredosporas unicelulares.
La fase Uredo/uredosporas es muy importante por ser repetitiva, se produce muchas
veces mientras el cultivo está en estado vegetativo. Hasta 20 o más
generaciones de uredosporas. Causas grandes epifitias. La uredospora puede germinar en la misma
hoja y formar otro tipo
de pústula que es una telia con teliosporas bicelulares; esto sucede en
plántula o cuando la planta madura
prematuramente causa una infección; una pústula en esta fase al germinar forma una basidia (4 basidiosporas).
El trigo es una planta introducida al Perú, en la época del
coloniaje, los agricultores a veces no desean cultivar
esta planta, no solo por temor a esta enfermedad, sino porque no responde
a sus expectativas económicas.
Actualmente, su cultivo
solo se realiza
en los valles interandinos, siendo
necesario, importar anualmente
la mayor parte del trigo que se consume en el
país.
1.
Coleosporaceae: Coleosporium solidaginis
2. Melampsoraceae: Melampsora lini “roya” del lino, Cronartium ribicola, Ceratelium fici.
3.
Puccinaceae:
Ejemplos: Uromyces phaseoli, “roya”
del frijol, (Caeoma, Aecidium, Roestelia, tienen la fase aecia).
Hemileia vastatrix produce la “roya”
del cafeto
Phakopsora vitis Syd. Causa la “roya”
sobre las vides, pústulas erumpentes en el envés y amarillamiento el haz.
Phakopsora gossypii (Arth.)
produce la “roya” en algodonero, se ha encontrado en la India, Venezuela y
Colombia.
Puccinia melanocephala (uredosporas) “roya” de la caña de azúcar; manchas
amarillas y luego marrón rojizo, manchas húmedas alargadas, paralelas a las
nervaduras, y visibles tanto en el haz como en el envés del parénquima foliar.
Las manchas están rodeadas de un halo amarillo y luego
se abren para originar las
pústulas que exponen las uredosporas. Estas estructuras son las que se
diseminan. La enfermedad se ve favorecida por condiciones de temperaturas y
humedad relativa alta, que hacen que germinen las uredosporas y penetran a las
hojas; se llega producir veces pérdidas considerables.
La
enfermedad se controla con uso de variedades resistentes, pero en caso que se
presente las condiciones favorables para el hongo y los daños sean de
consideración se aplican los mismos productos para la roya del algodonero.
P. coronata var.
avenae “roya” de la hoja en avena. Ramnus cathartica (hospedante
alternante).
Aecidium cantensis “roya” de la papa, posee la
fase aecia
Puccinia asparagi D.C., “roya” del espárrago autoica y macrocíclica,
en el valle de Chao, Virú.
Puccinia graminis Pers. “roya del trigo”
(Pústulas lineales a lo largo del tallo, hojas, vainas aristas y granos).
Puccinia
graminis f. sp. tritici roya morena o
de la hoja del trigo. Hospedante alternante es
el Thalictrum
sp.
Puccinia graminis f. sp. hordei, roya negra o roya
del tallo de la cebada
Puccinia graminis f. sp. secalis,
roya
negra o roya del tallo del centeno
Cada forma especial (f.
sp.) está subdividida a su vez en otros grupos que se denominan razas fisiológicas, cada una de las cuales
ataca a determinadas variedades de cada cereal. La identificación de estas
razas, se hace por medio de variedades diferenciales por cada cereal.
La clasificación de las cuales, depende la reacción que
ofrezcan al tipo de roya probada, de acuerdo a una clave internacional
establecida. Hasta 1965 se habían determinado 200 razas fisiológicas de Puccinia graminis tritici.
Todas las fases de P.
graminis pasan una parte de su ciclo biológico en B. vulgaris y otros Berberis.
En Huancavelica a 3254 msnm se ha encontrado B. divaricada Rusly, infectado por roya (aecidias), y lo mismo se
ha observado en Cajamarca, Perú.
Puccinia hordei
(P. anomala) produce la “roya de la cebada” H. intermediario Ornitoghalum
umbelatum.
Puccinia striiformis f. sp hordei, “roya amarilla” o
“de las glumas” de la cebada
Puccinia striiformis
f.
sp. tritici, “roya amarilla” o “de las glumas” del trigo. Thalictrum spp.
Puccinia
paulensis “roya del ají”
Puccinia pimpinellae
“roya”
del anís”
Puccinia
chrysanthemi “roya” del crisantemo
Puccinia helianthus “roya del girasol”
Puccinia purpurea se encuentra en la
grama china, sorgo y sudan grass
Puccinia polysora “roya” del maíz
Puccinia
orachidis “roya” del maní
Puccinia sorghi “roya” del Zea maydis y Oxalis spp.
Puccinia porri “roya” del ajo, es una
roya autoica. No está en Perú (Ames 1995)
Puccinia
cressae “roya” en Cressa truxillensis (royas
de plantas halófilas)
Phragmidium disciflorum “roya”
de la rosa es autoica; produce las
formas (0; I; II; III y IV)
Tranzchellia pruni-spinosae, produce la “roya”
del ciruelero
Uredo
cherimoliae “roya de la chirimoya”
Uromyces caryophyllinus produce
la “roya” del clavel Uromyces phaseoli var.
typica “roya” del frijol Uromyces cicerons arietinus “roya” del
garbanzo Uromyces fabae “roya” en
haba y lenteja
Uromyces pisi “roya” de la arveja
Uromyces medicagines roya de la alfalfa
Cephaleurus virescens Kunze, roya roja del té: pero en este caso es causada por un alga, en la
cara superior de las hojas son discos blancos y rojizos, delgados superficiales
y fuertemente adheridos (Bazán de Segura, 1965).
Asignación: Hacer la Escala para evaluar “Royas” en una Poacea y otra Fabaceae.
Figura 3: Ciclo de la
roya de los cereales. Cortesía R. Mont.
Control de royas. - Usar fungicidas de contacto como los Ditiocarbamatos, cúpricos, o sistémicos de acción tóxica (Triazoles:
Alto 100 SL y Granit SC), sulfonamidas y Baytan a las raíces, empleo de
variedades moderadamente resistentes en cebada (UNA-80, UNA- 8272, Buenavista, otras) en trigo y en otros cultivos brindan los mejores resultados en campo.
Hacer
labores culturales: enterrar las áreas afectadas, ventilación del campo y otras
más. Remoción de los hospedantes alternantes de patógenos, rotación de cultivos
para disminuir el incremento de las poblaciones de patógenos, seleccionar épocas
de siembra y evitar períodos favorables de fuertes daños, uso de semillas
libres de roya y cultivos trampa,
selección de sitios de cultivo,
poda, defoliación, aislamiento de otros cultivos,
manejo del área y
fertilizantes.
En
Conecticuct y Massachussets se dieron leyes para erradicar el Berberis (Parris 1968), como hospedante alternante de la roya del tallo del trigo
(Puccinia graminis) antes de que esta
interrelación fuera probada en 1865. Se enfatiza en Manejo integrado de plagas
(insectos y patógenos).
Orden Ustilaginales.
- Son hongos que causan los “Carbones” o “Tizones”. El
síntoma es una masa pulverulenta de color amarilla, anaranjado, verde o negro
que se forma en la parte aérea de la planta (tallos, inflorescencias, granos)
como si fueran “bolsas carbonosas”. Al atacar las Poaceas, el almidón del grano
es reemplazado por la masa pulverulenta negruzca muy notoria constituida por
las clamidosporas del hongo, éstas al germinar producen basidiosporas.
Poseen
una limitada época de infección y un lugar limitado en el hospedante para
producirla.
1. Ustilaginaceae:
Ustilago, Sphaceloma, Tecaphora.
2.
Tilletaceae: Tilletia barclayana (granos de arroz
reemplazados por masa carbonosa pulverulenta negra), Urocystes, Neovossia, Entiloma
3.
Graphiolaceae: Graphiola
phoenix.
Figura
4:
Ciclo biológico
de Tilletia caries, B, C, E, G, I, tomado con permiso de los autores, de Bunt
or stinking smut of wheat (planografiado), 1941, Holton y Heald, Burguess
Publishing Co., Minneapolis, con peermiso, del Manual of Plan
diseases, de F. D. Helad, 1926, McGRaw-Hill Book Co., Nueva York.
Se consideran los siguientes tipos de Carbones:
Ustilago nuda “carbón desnudo” de la cebada y del trigo; se cultiva en el laboratorio
y crece como levadura y no como hifas.
Ustilago
tritici “carbón desnudo del trigo”
Tilletia caries, “carie” o “carbón”
del trigo
Ustilago hordei, “carbón vestido de
la cebada”
Ustilago
kolleri, “carbón cubierto de la avena”
Urocystes cepulae “carbón de la
cebolla”
Neovosia
horrida “carbón del grano del arroz”
Ustilago maydis “carbón del maíz”
Tecaphora solani “carbón de la papa”
Figura 5: Carbón del maíz amarillo en campo - Tucume-2002.
Lambayeque. Fototeca
M. Olivos.
Ustilaginoidea virens.- La literatura
fitopatológica citan a (Atkins 1974,
Cheaney y Jennings 1975, Ou 1972, Revilla 1951, Revilla 1955) que mencionan al
hongo causante del “Falso carbón del
arroz”, según García (1979) del Centro de Investigaciones de arroz en Vista
Florida, Ferreñafe al hongo U. virens que pertenece a
Ascomycetes (Orden Sphaeriales) y no a la Clase Basidiomycetes (Ustilaginales)
al cual pertenecen los “carbones” propiamente dichos, por lo cual estoy en
desacuerdo dado que no se encuentran ascostromas. Cada una de las panojas
muestran de 1 a 7 masas (spore balls) coloreadas, que remplazan completamente
al grano y con un máximo de 11 mm, con masas de color anaranjado intenso y
color verde oscuro. Hoy se registran en variedades modernas desde la campaña
2005-2006.
Ustilago scitaminea “Carbón en caña de azúcar”, presente en
Paramonga (Perú), Colombia, Ecuador y en los campos azucareros de ex
cooperativas agrarias en Lambayeque.
Entyloma oryzae H. &
P. Sydom “Carbón
de la hoja de arroz”,
los síntomas son manchas
lineales, rectangulares o elípticos angulares en las hojas, son de color negro
plomizo, cubiertas por la epidermis. Al remojar en agua durante unos cuantos
minutos, la epidermis se rompe poniendo de manifiesto abajo una masa de esporas
negras. La cantidad y la fecha de aplicación del nitrógeno tienden a influir en
la severidad de la enfermedad.
Figura 6:
Ciclo de vida del Ustilago maydis. Tomado de Fincham &c Day.
Control de los tipos de Carbones:-
1. - Carbones de
Infección floral
Tratamiento
de la semilla con agua caliente, que consiste en remojar la semilla por 10
minutos en agua a 54º C, enfriar inmediatamente en agua fría y esparcir la
semilla para que se seque antes de sembrar. Aunque el agua caliente no resulta
práctica para grandes lotes de semilla, se justifica si es para lotes aislados.
Se puede remojar la semilla por 4 - 5 días a 21-24 º C y tratamiento de semillas con Vitavax a dosis de 150 a 200 g
/ 100 k.
El
empleo de Vitavax-300, a dosis de 150-200 g / 100 k de semillas o menos y
promover la rotación de cultivos.
Realizar
prácticas culturales, como destrucción de plantas infectadas antes de que las
agallas revienten y evitar abonos con guano de corral procedentes de animales
alimentados con mazorcas o tallos carbonosos. En caso del “carbón del grano de
arroz” se recomienda el uso de variedades resistentes en la zona.
Polygonum hydropiperoides Michx.var.
psilostachyum, se encontró a este
hospedante infectado por pequeñas agallas de carbón en el Abra de Porculla,
Lambayeque, 2004 Posibles agentes causales son:
Ciadorrhinium foecundissimum Sace et. Marchal
Melanopsichium austro-americanum Melanopsichium pennsylvanicum Hirschh
Ustilago anomala (floral smut ó
carbón floral)
Ustilago bistortarum (inflorescence and leaf
smut), U. shastensis
U.
tenuispora, Ustilago basniaca, U. piperi.
U.
utriculosa (inflorescencia carbonosa, carbón desnudo, seed smut) Busgoa nigra (Hots)
G. C.
U.
hydropiperis (semillas de carbón
cubierta).
Basidiocarpo
no tabicado ni profundamente dividido; incluye setas, hongos en ménsula, hongos
corales, bejines, estrellas de tierra, hongos nido de pájaro. Las basidiosporas
germinan por medio de un tubo germinal.
Palabras clave: Cistidios (semejante a
basidia pero estériles), basidiolas (semejante
a basidias pero estériles), setas,
esferocistes (células esféricas o células globosas que se encuentran entremezcladas con el micelio
en el himenio), peridíolo, cámara glebal de pared
dura, cereacea con basidiosporas. Medas,
son terminales de hifa que rompen el estrato himenal. Acantofisas, son terminales de hifas que se caracterizan por la
presencia de proyecciones laterales cortas.
Dendrofisas, igual a las anteriores
pero ramificadas. Equinodios, son una
especie de espinitas que se presentan en la superficie de cualquiera de las estructuras
citadas. Glebas:
La
clave simplificada en esta subclase según Alexoupoulos (1968) y Roncal (1993) es
como sigue:
Exobasidiales:
basidiocarpo ausente, himenio cubre la superficie del tejido vegetal
parasitado. Exobasidium vaccinii,
parasitan a Theaceae y Lauraceae.
Basidiocarpo presente y es abierto, bien desarrollado,
basidias sin septas y con cuatro basidiosporas.
1. AGARICALES. - “Hongos
de sombrero”, son comestibles. Son de interés por que se asocian con plantas
superiores para formar micorrizas. Otras son venenosas con toxoalbuminas y
alcaloides o parásitos.
Agaricaceae: Amanita muscaria, A. verma (angel destructor), Pholiota
precox, Pleurotus ostraetus (Jacq.
Ex Fr.) Kummer, Agaricus campestris var.
bisporus, Panus sp., Volvariella,
Lepiota rachodes, Shizophyllum sp.
Tricholoma sp. Crinipellis perniciosa (Stahel)
Singer: “la escoba de bruja” del Thebroma
cacao (cacao).
Boletaceae: Boletus edulis (boletina) o Cricunopus Kartps. Exobasidiaceae: Exobasidium
vaccinii Woron Paxillaceae: Paxillus
atramentosus
Russullaceae: Rusulla emetica
Hygrophoraceae: Hygrophorus coccineus
2. POLYPORALES. - himenio
dispuesto en diversas formas, los basidios en poros y resistentes:
Telephoraceae: Corticium solani = Pillicularia
filamentosa y Thanatephorus cucumeris
= Rhizoctonia
solani Kühn. Pellicularia
koleroga (arañero del rosal), Stereum
hirsutum.
Clavariaceae: Clavicorona pixidata, Ramaria stricta
Cantarellaceae: Cantharellus cibarius
Hydnaceae: Hericium erinaceus, Echinodactium tinctorium
Polyporaceae: Polyporus squamosus, Fomes
applanatus, Ganoderma lucidum, G. applanatum.
Figura 7: Agaricus bisporus (champiñones). Empresa Pacus. Lima, Perú. Fototeca María I.
Olivos (2005).
El
basidiocarpo es cerrado no desarrollado, recubierto de una a dos capas de
peridio, redondo, siendo la capa externa generalmente gruesa y coriácea.
Presentan diversas formas de glebas (parte fértil del basidiocarpo, es
interna): coraloide, lagunar, unipileada, multipileada. Las basidiosporas son
diseminadas por dehiscencia del basidiocarpo o por una abertura o estoma que se
forma a la madurez.
1.
HYMENOGASTRALES.- Gleba cartilaginosa, no se descubre a la madurez
Hymenogastraceae: Geastrella Hysterangiaceae: Leucogaster arcularius Melanogastraceae: Melanogaster
sp.
Hydnaginaceae: Arcangeliella
Scotiaceae: Elasmomyces
2.
LYCOPERDALES.- Un peridium
externo engrosado y el peridium interior es
delgado.
Lycoperdaceae.- Lycoperdon sp. y Clavatia sp.
Geastracea: Geastrum rufescens, peridium a la
madurez se rompe y se abre a manera de una estrella.
Tulostomatacea: Tulostoma campestre, T. simulans, la
gleba es lagunar
Sclerodermatacea: Scleroderma verrucosum, es un hongo
simbiótico con gleba compacta.
4.
PHALLALES.- En estado de
“huevo” el peridium es coriáceo.
Phallacea: Phallus impudicus, P. ravenelii
Clathraceae: Clathrus ruber
5.
NIDULARIALES.- presenta peridio,
externo, y peridiolas coráceos dentro de una
bolsa
Nidulariacea: Crucibulum vulgare, Cyathus stercoreus y Nidularia sp. El primero tiene las
peridiolas conectadas a la pared lateral del peridio y durante la descarga del
funículo queda en el peridio, en la segunda especie la cuerda funicular queda
adherida a la peridiola, y en Nidularia tiene
peridiolas embebidas en mucilago y no tiene la cuerda funicular.
Figura 8: Bejin (Coprinus sp. Basidiomicete). Fototeca. M. I. O.
J.L.O.
Chiclayo. 2006.
Figura 9: “Sombrerito” (Lepiota sp. Basidiomicete)
El ser viviente más extenso del planeta es el fungi Armillaria ostoyae que se extiende en
una superficie de 10 millones de m2 en un bosque de Oregón, Estados
Unidos y México. Ha estado creciendo durante
miles de años y
por tanto es uno de los organismos más longevos del planeta.
Las setas ostra son algunas de las más populares en la cocina contemporánea.
Entre más pequeñas sean son más flexibles y de sabor menos áspero.
A.
ostoyae (hongo miel), Pleurotus ostreatus, Pleurotus eryngii son hongos tipo setas saprófitos
comestibles son en forma de concha, gírgola, champiñón ostra, bolet d´orella,
oreja de palo, belarri landu.
Las setas ostra son cultivables, de allí que sean
accesibles en los mercados mundiales. Son una fuente de proteínas, grasas,
carbohidratos, vitamina B y antioxidantes. Cuando están frescas al 88% de humedad. La seta ostra es de los hongos
más valiosos y saludables
de Europa, ya que contiene muchas
sustancias biológicamente activas con propiedades antivirales, antibacterianas
y efectos antiinflamatorios. Las investigaciones demuestran que la proporción y
cantidad de las sustancias activas contenidas en la seta ostra son ideales para
el cuerpo humano, además, no se han registrado efectos adversos, ni sustancias
que sean peligrosas para la salud humana.
El micelio de las setas ostra se extiende debajo de la
corteza del árbol donde crecen. Tiene la particularidad de atacar a los
nematodos, para emplearlos como alimento. El micelio genera hifas que emiten
una sustancia química que ataca a los nematodos, se trata de una sustancia
pegajosa que paraliza a la presa. Posteriormente, las hifas se introducen por
la boca de los nematodos y emite unas proteínas que los digieren de adentro
hacia fuera. Es muy importante este recurso, pues aporta uno de los nutrientes
fundamentales para la vida que es el nitrógeno. Aunque este elemento es uno de
los compuestos más abundante del aire, ni los animales ni estas setas lo pueden
absorber directamente. Los hongos lo obtienen de los nematodos y los consumen
animales y plantas.
El interés de estudiar el micelio de las setas ostra es analizar cómo ataca a los nematodos;
generan proteínas que se unen en cadenas capaces de rodear y perforar las
células que devoran; posteriormente, otro tipo de proteínas ingresan en su
interior y las destruyen.
Este mecanismo podría
brindar herramientas para combatir células
cancerosas en humanos; por
supuesto, falta mucho por hacer antes de que sea un procedimiento efectivo y seguro, J. Fierro, y comunicación
personal de J. Laos. Biota (16 enero 2021).
Es necesario estudiar cómo los hongos ostión atacan a su
presa empleando una sustancia llamada Pleurotolysin, (para curiosos), son parte de la ciencia
básica que nos puede ayudar a combatir enfermedades humanas
como el cáncer ya que es una forma
de destruir células.
Las plantas también pueden ser afectadas por las algas como
Cephaleurus viriscens que produce puntos o círculos
pequeñitos en las hojas y ramas de los árboles,
estos puntos tienen una estructura afieltrada y un color
marrón rojizo o verde grisáceo,
de acuerdo a la época
del año en la Amazonia. Aunque muchas lesiones se juntan cubriendo grandes
y a veces hasta la extinción de las ramas.
Figura
10: Setas ostra: Basidiomycetes
Figura 11: Setas ostra: Basidiomycetes
Los síntomas o signos típicos nos permiten conocer que
patógenos está produciendo la enfermedad, en muchos casos se requiere hacer
observaciones microscópicas, observaciones que por otro lado tuvieron
que hacerse para relacionar los síntomas y signos con el agente causal. Cuando el patógeno produce
abundante micelio o fructificaciones sobre el hospedante, es suficiente hacer
un simple raspado sea material fresco o herborizado y efectuar la preparación
para la observación microscópica.
Si el patógeno produce micelio o fructificaciones, pero
estas se encuentran en el interior del
hospedante entonces es necesario efectuar cortes ya sea a mano o con micrótomo
o extraer las fructificaciones con una aguja de disección, para hacer la preparación.
Si el patógeno no tienen el suficiente desarrollo para
permitir hacer una preparación microscópica se puede recurrir al empleo de
cámara húmeda o la siembra en medio de cultivo. Estos métodos solo pueden
emplearse cuando se trata de organismos saprobios o parásitos facultativos.
Para facilitar la preparación y observación de un organismo
que se halla en una muestra demasiada seca, debe adicionarse sobre dicho
material una gota de hidróxido de potasio al 2-10%. En algunos casos para
facilitar la observación de estructuras se emplean los colorantes. Ej. el azul
de metileno sobre todo si se tiene micelio, esporas, septos y apéndices
hialinos.
En un material se desea observar las relaciones
histológicas del patógeno con el hospedante es necesario efectuar cortes al
micrótomo, para lo cual se emplea técnicas especiales de fijación.
Si se trata de bacterias es práctica usual y necesaria
emplear los colorantes como violeta de genciana, eritrosina, safranina y otros.
O utilizar un sistema de tinción. Por ejemplo, el colorante de Gram, que
permite determinar si las bacterias son Gram positivas o Gram negativas.
Cualquiera de los casos citados,
las preparaciones microscópicas pueden hacerse temporal
o permanente.
Temporal: usado mayormente en su
conservación, empleándose generalmente agua. Permanente: Cuando se desea conservar por tiempo prolongado,
utilizando sustancias como Bálsamo de Canadá, lactofenol, gelatina-glicerina, azul
de metileno y otros.
Cámara húmeda: La cámara húmeda consiste
en un recipiente transparente de polietileno debidamente desinfestado en el
cual hay agua en cantidad suficiente para garantizar un ambiente húmedo y
dentro del cual se coloca una pequeña muestra de una planta enferma
desinfectada, sin que toque la superficie del
agua. Es el remplazo de una estufa o incubadora.
Modo de hacer la Cámara húmeda. - Tomar un
trozo de material enfermo, desinfectarlo pasándolo lentamente por la llama del
mechero o cortarlo asépticamente en trozos: desinfestar la cámara húmeda con
alcohol, dejar que se evapore y luego verter un poco de agua estéril y por
último colocar un trozo de material enfermo sobre la lámina de vidrio. Observar
a los 4-7 días el crecimiento y desarrollo fungoso cuando es estación de
invierno.
Hacer una preparación para la observación microscópica e identificar al
patógeno.
Cultivo en medio
artificial. - En un procesamiento largo que consiste en pasar a sembrar una pequeña
porción de muestra enferma en un medio de cultivo artificial ya sea sólido o líquido y que ha sido
previamente vertido en una placa Petri o en tubo de ensayo y luego hacer diversos preparados microscópicos para
observar la morfometría de los hongos.
Disolver el medio de cultivo (si este es sólido), por
ejemplo: (agar nutritivo, papa-dextrosa agar, agar Sabouraud) en baño maría,
deje enfriar hasta
que la temperatura sea tolerable
a la palma de la mano,
verter el medio de cultivo
en placas de Petri, aproximadamente 20 ml por placa, previamente esterilizada y bajo
condiciones de asepsia (Cámara de inoculación) deje solidificar.
Lavar el material
enfermo a sembrar, en agua corriente, eliminando todas las impurezas. Cortarlo
en trocitos de 0,5 cm en el límite de la zona enferma y sana. Desinfestar el material
con alcohol a 76° o hipoclorito de sodio al 1%:
Luego
proceda al cultivo del material enfermo estéril sobre el agar semisólido en la
placa de Petri. Escriba el nombre del material sembrado con plumón de tinta
indeleble el contenido y la fecha en la tapa de la placa. Colocar las placas en
la estufa, teniendo en cuenta que deben colocarse con el medio de cultivo o
agar hacia arriba, cerrar y esperar unos días.
A los 7 días hacer una preparación microscópica y observar
al microscopio compuesto a menor aumento el crecimiento y desarrollo de hongos
en las placas de Petri y con la ayuda de la Guía de práctica y las claves de
identificación taxonómica de hongos se procederá a identificar los hongos.
Referencia:
Castaño, J. (1986).
1.
El microorganismo siempre debe de
estar asociado con la enfermedad y a su vez la enfermedad no se debe presentar
sin que el organismo o agente causal se encuentre presente o haya estado presente.
2.
El microorganismo en cuestión debe
ser aislado en cultivo puro y deben estudiarse sus caracteres específicos.
3.
El microorganismo debe aislarse de
los tejidos enfermos, cultivarse o identificarse con aquel inoculado.
4.
Que de la planta artificialmente
inoculada se pueda reaislar el agente patógeno, el que debe corresponder
exactamente al inoculado.
Los cuatro postulados de Koch que son la base para la
determinación exacta de las enfermedades de las plantas, a veces no es posible
realizar todas ellas, pues algunos hongos no, se pueden cultivar en los medios
artificiales de cultivo.
Tratándose de virus, el problema es más complicado
pues como ya se aceptado por los fitopatólogos no se puede cultivar en estos
medios de cultivo. Quedaría por eso, tan solo el efectuar las inoculaciones artificiales
de plantas enfermas a plantas sanas. Siendo esto fácil de realizar con ciertas
clases de virus que atacan a vegetales como son los casos de los virus que
afectan la caña de azúcar, el tabaco, la papa, el sorgo, el maíz, el tomate
entre otros en los cuales se han desarrollado métodos especiales para cada uno
de ellos como en el caso de la “psorosis del naranjo” que es demasiado difícil
según lo reportó el extinto García Rada en 1946.
PRÁCTICA 15
Nematodos provienen de los vocablos
griegos nema (hilo) y eidés
u oidos (con aspecto
de), son definidos como animales filiformes con cuerpo sin segmentos y
más o menos transparentes, cubierto de una cutícula
hialina, la cual está marcada
por estrías o anillos; son redondeados, poseen boca y carecen de
apéndices; aunque las hembras adultas de algunos géneros son abultadas, como Meloidogyne Goeldi y Heterodera Schmidt (Siddiqi, 2000; Perry
& Moens, 2006). La mayoría son microscópicos, con una longitud entre 300 y 1.000
mm, y entre 15 y 35 mm de diámetro
(Agrios, 2005; Luc et al., 2005; Perry
& Moens, 2006).
Los nematodos son parásitos microscópicos, taxonómicamente
se les ubica dentro del reino animal en el Phylum de los Aschelminthes. Los
nematodos tienen gran importancia por causar pérdidas cuantiosas en diversos
cultivos. Los cultivos afectados se ubican en
parches o manchas. Para observar los nematodos se hacen necesarias
técnicas especializadas de extracción a partir de tejido vegetal o de suelo.
Al microscopio los nematodos son delgados traslucidos de
forma ahusada. Según la edad y especie la hembra varia morfológicamente del
macho, pero todos tienen una característica común que es la de presentar un estilete, con el cual causan heridas
en el hospedante, énfasis la
raíz. Las plantas afectadas por nematodos se hacen más sensibles a la falta de
humedad, fertilización pobre, otros. Y sucumben fácilmente ante enfermedades
fungosas, bacterianas y virales. Los síntomas se presentan en la parte aérea o
subterránea en el hospedante.
Aphelenchoides
parietinus. Afecta el algodón
Síntomas: necrosis, debilitamiento de las yemas y puntos de crecimiento en la
porción aérea de la planta.
Anguina tritici. Afecta trigo
Síntomas: Encrespamiento del follaje,
agallas en las semillas.
Aphelenchoides beseyii.
Orquídeas Síntoma: Caída de las
flores
Aphelenchoides ritzemabosi.
Crisantemo
Síntomas: Manchas cloróticas y necróticas en las hojas.
Phytophthora
más
nematodos
Síntoma: Manchas necróticas radiculares.
Dytylenchulus
dipsaci. Cebolla. Síntoma: Pudrición en el bulbo Meloidogyne incognita. Varios cultivos.
Síntoma: Agallas o nódulos en
las raíces u órganos subterráneos.
PROCEDIMIENTOS PARA EL
DIAGNÓSTICO DE ENFERMEDADES DE PLANTAS
Clave
para el diagnóstico de agentes causantes de enfermedades. La secuencia para
iniciar el diagnóstico consiste en seguir la clave de French y Hebert (1982):
1.
A1 Manchas y Chancros
2.
B1 Signos de patógenos visibles al microscopio estereoscópico.
3.
C1 Signos de hongos:
Realice preparaciones microscópicas de las estructuras con tinción
cuando sea apropiado….............................................................................................................. 12
Guzmán-Piedrahita Ó.A., Jairo Castaño-Zapata y Bernardo
Villegas-Estrada
4.
C2 Signos de bacterias (exudado o manchas húmedas):
5.
Realice preparaciones microscópicas
para observar flujo bacterial en campo oscuro, luego efectúe tinción de Gram…......................................................................................... II
6.
B2 Ausencia de signos de patógenos.
7.
C1 Incube la muestra en cámara húmeda y luego regrese a A1
……………………………......................................................................................III
8.
C2 Mosaicos, moteados u otros síntomas virales posibles.
9.
C3 Decoloración y otros síntomas de desnutrición.
10.
A2 Marchitez
11.
B1 Sistema radical
afectado.
12.
C1 Presencia de nematodos o sus síntomas.
13.
C2 Pudrición radical, tratar como
A1 B2 Sistema vascular descolorado.
C1 Prueba
de flujo bacterial en agua, luego efectúe tinción de Gram……................
II
C2 Ausencia
de flujo, hacer
corte para observar hongos……………………………………I
14.
A3 Pudriciones
15.
B1 Tallo o raíz, tratar como A1
16.
B2 Órganos de reserva (tubérculos, raíces)
17.
C1 Realice preparaciones
microscópicas y observe para hongos, con tinción cuando sea indicado I
18.
C2 Haga preparaciones para observar
bacterias en campo oscuro (microscopio de contraste de fase), luego realice la
tinción de Gram….......................................................... II
19.
C3 Inocule tejidos sanos con los
afectados cuando la pudrición es avanzada; luego observe como C1 y C2........................................................................................................ IV
SECUENCIA
PARA REALIZAR UN DIAGNÓSTICO CORRECTO
Para realizar un diagnóstico correcto
se recomienda seguir la secuencia
propuesta por Streets (1972):
a) Identifique la planta hospedante, adicionando la variedad. b) Síntomas en el
campo. Utilice su propia información o use la proporcionada por quien envía la
muestra c) Condiciones de cultivo. Información del tipo de suelo, prácticas de
riego, fertilización y aplicación de plaguicidas d) Síntomas en detalle.
Observación de manchas, añublo foliar, pudrición de semillas o frutos, cancros
en las ramas o tallos, pudrición o agallas en las raíces,
otros. e) Observación en aumento bajo.
Observación con la lupa de alto aumento en el campo, un estereoscopio en
laboratorio de la superficie de las lesiones o tejidos muertos; esto permitirá observar la presencia de esporas,
cuerpos fructíferos de hongos o exudados bacterianos. f) Observación por el microscopio compuesto para detallar
las estructuras. g) Aislamiento: Aislar el microorganismo sospechoso en
condiciones asépticas de laboratorio. h) Patogenicidad. i) Si el patógeno en
observación es identificado con manuales especializados, y los postulados son demostrados, el patógeno aislado
es el responsable de la enfermedad.
Si el patógeno observado es el causante de la enfermedad,
pero no existen informes previos, entonces se debe recurrir a los postulados de
Koch, establecidos en 1876:
1. Debe haber una
asociación constante entre el organismo y el hospedante enfermo.
2. Se
debe aislar el patógeno sospechoso del hospedante enfermo y obtenerlo en
cultivo puro.
3. Se debe inocular un hospedante sano con el cultivo puro del organismo
sospechoso y reproducir los
síntomas típicos de la enfermedad.
4. Se
debe reaislar el patógeno en cultivo puro a partir del hospedante inoculado y
enfermo y sus características deben ser exactamente iguales a las observadas en
el cultivo obtenido en el segundo postulado.
Después de diagnosticar correctamente el agente etiológico
de la enfermedad, el agricultor se preguntará ¿qué puedo hacer con la
enfermedad? y ¿cuál es el manejo? Especificar la mejor medida de manejo de cada
enfermedad es difícil. La respuesta correcta a estos interrogantes se obtiene
consultando referencias selectas, fundamentalmente a través de la experiencia
que tenga el Fitopatólogo, como lo expresó Streets “no hay sustituto para la
experiencia”.
Si no se encuentra algún organismo o agente asociado
a la enfermedad, se asume
que es causada por un factor ambiental, el cual puede interferir con las
funciones fisiológicas normales de las plantas.
Técnicas
inmuno-enzimáticas. - son
pruebas rápidas para identificar patógenos de
plantas. El ensayo
de inmuno-absorción ligado
a la enzima (ELISA, por sus siglas en inglés) es el más usado
por su especificidad, simplicidad y bajo costo.
Esta técnica que se realiza en
platos de poliestireno, utiliza los anticuerpos (inmunoglobulinas) producidos
por el sistema linfático de un vertebrado (conejos, ratones, otros) para
reconocer un antígeno específico (proteínas, epítopes o determinantes
antigénicos), es decir, el agente, sustancia o microorganismo extraño nyectado
en el torrente sanguíneo del mismo; por lo tanto, la reacción será específica
de cada anticuerpo para su respectivo antígeno (Dewey, 2002). Hoy existe la
técnica CRISP.
Técnicas
bioquímicas y moleculares. - La identificación de bacterias
se han basado en las pruebas fisiológicas y bioquímicas, mientras que las
identificaciones de hongos se continúan realizado con base en características
morfológicas, tales como tipo de espora, forma y color de las esporas. Sin
embargo, en los últimos 40 años, los avances en bioquímica microbiana y
biología molecular han permitido la expansión de los métodos de diagnóstico y
procedimientos de identificación de diferentes patógenos de plantas. La
detección de actividades fisiológicas y bioquímicas se realiza fundamentalmente
sobre medios sólidos o líquidos, y se basa en la apariencia del crecimiento o
un cambio de color. Estas pruebas involucran la adición de sustratos apropiados
al medio, junto con un sistema que permite la detección bien sea de su
degradación o de uno de los productos asociados con ella (Bridge, 2002).
LÍQUENES
Liquen deriva del latín lichen, dos seres simbióticos. La taxonomía de los líquenes no constituye un grupo natural
sino biológico, se los clasifica
dentro del reino Fungi. En efecto,
los líquenes son hongos (en su
mayoría Ascomycetes), que
se asocian con algas (Cloroficeas y Cianoficeas).
En ésta asociación los hongos, denominados micobiontes, son
los encargados de conformar generalmente la estructura tallina o cuerpo
vegetativo del liquen, y las algas o fotobiontes, los constituyentes
fotosintetizadores.
Atendiendo
a su morfología en cuanto a talos y la manera de adherirse al sustrato se
pueden distinguir varios tipos de líquenes:
·
Líquenes Fruticulosos
·
Líquenes Foliáceos
·
Líquenes Escamosos
·
Líquenes Gelatinosos
·
Líquenes Filamentosos
·
Líquenes Crustáceos
Unidos
al sustrato por una superficie de fijación reducida y con forma de pequeños
arbustos. Pueden ser cilíndricos, Usnea
y Alectoria, o laciniados, Evernia, Ramalina y Cetraria (distintas formas).
Reino: Fungi Reino:
Fungi
División: Lichenes Filo: Ascomycota
Clase:
Ascolichenes Clase: Lecanoromycetes
Familia:
Usneaceae Familia: Parmeliaceae Género: Usnea
Alectoria sarmentosa
Usnea australis
Reino: Fungi Reino:
Fungi
Filo: Ascomycota Filo: Ascomycota
Clase: Lecanoromycetes Clase: Lecanoromycetes
Familia:
Parmeliaceae Familia:
Ramalinaceae Musgo del roble Género: Ramalina
Evernia prunastri Ramalina canariensis
Se extienden sobre
el sustrato, fijándose a él mediante un conjunto de ricinas, Xanthoria o
Physcia, o por un solo
punto Umbillicaria y Dermatocarpon.
Reino: Fungi Reino: Fungi División: Mycota División: Ascomycota
Clase: Ascomicetes (liquenizados) Clase: Lecanoromycetes
Familia: Telosquistáceae Familia: Physciaceae
Especie: Lichen
parietinus Especie:
Physcia sp.
Xanthoria parietina Physcia
millegrana
Reino: Fungi Reino: Fungi Clase : Ascomicetes (liquenizados) División: Ascomycota
Familia: Umbilicariaceae. Clase: Eurotiomycetes Familia: Verrucariaceae
“Tripa de roca” Género: Dermatocarpon
Umbilicaria spodochroa Dermatocarpon miniatum
Se caracterizan por estar formados por un conjunto de
escamas cercanas entre sí y por presentar un borde no adherido al sustrato,
Ejemplo: Psora.
Distribución
geográfica: Poco frecuente, en peligro de extinción en
varias zonas geográficas del centro de Europa. Abundante en las montañas
calizas y yesíferas de la península.
Característica peculiar:
Inconfundible, sus escuámulas o areolas de talos
crustáceos, su color rojizo y sin dudas
muestran sus apotecios.
Familia: Lecideaceae
No tiene nombre
común
Fig. Psora
decipiens
Líquenes
Gelatinosos
Adquieren una textura cuando menos flexible y pulposa al
encontrarse húmedos. En este estado pueden llegar a ser traslúcidos. (Este tipo
de líquenes son muy parecidos al liquen escamoso); talos gruesos, quebradizos
cuando se encuentran secos y muy blandos e hinchados en presencia de agua.
Reino: Fungi
División: Ascomycota
Clase: Lecanoromycetes
Familia:
Collemataceae Genero: Collema
Especie: Collema
cristatum
Reino: Fungi
División: Ascomycota
Clase: Lecanoromycetes
Familia: Collemataceae
Especie:: Leptoglum phyllocarpum
Están constituidos
por una maraña de filamentos finos y de aspecto lanoso, Cystocoleus,
Racodium. (parecido casi
idéntico al fruticuloso).
Reino: Fungi
Filo: Ascomycota Clase: Dothideomycetes Familia: Cystocoleaceae
Son el grupo más numeroso, agrupa a los líquenes que se
conocen fuertemente adheridos al sustrato, son mayoritariamente saxícolas
(viven sobre la roca), pero también hay especies cortícolas que viven sobre
superficies leñosas; folícolas que aparecen sobre hojas persistentes; lignícolas, sobre madera muerta;
terrícolas, sobre la tierra desnuda
y humícolas sobre el humus.
Reino: Fungi
Filo: Ascomycota
Clase: Lecanoromycetes
Familia: Rhizocarpaceae Familia: Lecanoromycetes
Reino: Fungi
Filo: Ascomycetes
Clase: Lecanoromycetes
Familia: Teloschistaceae
REFERENCIAS
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General. Impreso. Universidad Nacional Pedro Ruiz Gallo. Lambayeque, Perú. 108 pp.
ANEXO
1
Fig. 1. Abarquillamiento de las hojas del maíz
amarillo
Fig. 2. Secuencia de los
eventos de una simple colección de inoculación artificial de Septoria en campo de trigo (método
directo) I. colección de hojas simples.
II. Mantenimiento de la hoja sobre una lamina de vidrio con
picnidia. III. Inoculación de la hoja con picnidia en ambiente húmedo. IV.
Transferencia de esporas al medio con antibiótico. V. Transferencia de la
colonia de Septoria a tubo y
conservación por 20°C VII. Agitación de cultivos de S. tritici en medio liquido a 18- 20 °C VIII. Observación de
suspensión conidial y contaje de esporas IX. Aspersión de suspensión de esporas
conidiales en campo en días de lluvia o en noches húmedas. Tomado de: Septoria
Diseases of Wheat, Eyal, Z. et al (1987).
Fig. 3 Control biológico vs el control químico
hacia Sclerotium rolfsii in vitro con
agar Sabouraud.
Gli.
= Gliocladium sp. Str. = Streptomyces rimosus Tri. =
Trichoderma viridens
PCNB
= Pentacloronitrobenceno
Olivos, M.I (1995)
Fig,
4. Raíz
de tomate con nodos o agallas por Meloidogyne
sp-
Fig. 5. Meloidogyne
sp
v
